Искусственное осеменение кроликов: современное состояние и практические возможности метода

 Актуальность. Кролики обладают большим репродуктивным и продуктивным потенциалом. При промышленной (конвейерной) системе производства крольчатины маточное поголовье кролефермы делят на производственные группы и осеменяют искусственно в строго фиксированный день недели на 4-е или (чаще) 11-е  сутки лактации. К осеменению допускают только  клинически здоровых и упитанных самок. Показано, что при  интенсивном ритме воспроизводства стада от одной  крольчихи ежегодно можно получать от 40…55 до 60…65 отъемных крольчат и производить до 120 кг крольчатины.

Методы. Рассмотрены и проанализированы  технологические процессы и практические возможности метода искусственного осеменения кроликов.

Результаты. Работу по искусственному осеменению кроликов проводят в следующем порядке: 1) получение спермы; 2) оценка качества эякулята; 3) разбавление и хранение спермы вне организма; 4) стимуляция половой активности и диагностика рецептивности самок к  осеменению; 5) введение спермы в половые пути самки с  медикаментозной индукцией овуляции. Сперму от кролей- производителей получают на рецептивную самку с помощью искусственной вагины: 1 раз в неделю методом  дуплетной садки с перерывом 15 мин. Процесс взятия спермы на искусственную вагину занимает в среднем 26,2  сек. После макро- и микроскопической оценки эякулят  разбавляют 1:5…1:10 искусственной средой на основе Трис- или HEPES-буфера. Для разбавления и кратковременного  хранения спермы непосредственно в условия производства  (до 24…48 час.) применяют также готовые к использованию коммерческие экстендоры (Lepus®, Cortalap®, Merk III®, Formula® и др.). Отбор крольчих для осеменения проводится по признакам течки и половой охоты. За 48 час. до плановой инсеминации всем подсосным крольчихам производственной группы рекомендуется вводить гонадотропный препарат фоллигон (п/к или в/м в дозе 20 МЕ). Экзогенная гонадотропная стимуляция индуцирует  циклический рост фолликулов, синхронизирует проявление  половой активности у крольчих производственной группы, повышает результативность осеменения и выход отъемных крольчат. Техника искусственного осеменения крольчих достаточно проста. При помощи шприца-полуавтомата со съемным одноразовыми пластиковым катетером сперму  вводят в краниальную часть влагалища в объеме 0,5 мл. При  эффективной организации труда техник-осеменатор с помощником за 1 час могут осеменить до 150 кролематок (с одновременной гормональной индукцией овуляции).  Хорошие результаты, практически как при естественном  осеменении, получают при использовании для инсеминации свежеполученной разбавленной или  разбавленной охлажденной спермы со сроком хранения до 6…12 час. 

1. Soliman F., El-Sabrout K. Artificial insemination in rabbits: factors that interfere in assessing its results// J. Anim. Behav. Biometeorol. — 2020. — Vol. 8. — P.120–130. DOI: 10.31893/jabb.20016

2. FAOSTAT. 2012. The Statistics Division of the FAO. http://faostat.fao.org/.

3. Zotte A. D. Rabbit farming for meat purposes// Animal Frontiers. — 2014. — Vol. 4. — No. 4 — P. 62 -67. doi:10.2527/af.2014–0035

4. Lebas F. The rabbit husbandry, health and production/ F. Lebas, P. Coudert, H. de Rochambeau, R.G. Thébault// FAO Animal Production and Health Series. — 1997. — No. 21. — 205p.

5. Агейкин А.Г. Технологии кролиководства: курс лекций [Электронный ресурс]. Красноярский государственный аграрный университет. — Красноярск, 2020. — 393 с.

6. Di Iorio M. Cryopreservation of rabbit semen: effectiveness of different permeable and non-permeable cryoprotectants on post-thaw sperm quality and reproductive performances. Thesis, university of Molise, Italy, 2014. — 132p.

7. Theau-Clément M. Preparation of the rabbit doe to insemination: A review // World Rabbit Sci. — 2007. — Vоl.15. — P. 61–80.

8. Morrel J.M. Artificial Insemination in Rabbits// British Vet. — 1995. — Vol. 151. — P.477–488.

9. Patton N.M. Colony husbandry/In: The Biology of the Laboratory Rabbit 2nd ed. Eds. Manning P.J., Ringler D.H., Newcomer C.E. — Academic Press, New York, 1994. — P. 27–45.

10. Дюльгер Г.П. Физиология и биотехника размножения животных. Курс лекций: Учебное пособие. — СПб.: Издательство «Лань», 2018. — 236 с.

11. Theau-Clément M., Ailloud E., Sanchez A., Saleil G. Relationships between rabbit semen characteristics and fertilizing ability after insemination/ // Animal. — 2016. — Vol.10. — P.426– 431.

12. Boiti C. Guidelines for the handling of rabbit bucks and semen/C. Boiti, L. Liguori, C. Castellini, F. Pizzi //World rabbit Sci. — 2005.- Vol.13. — P.71–91.

13. Mocé E., Vicente J.S. Rabbit sperm cryopreservation: A review// Animal Reprod. Sci. — 2009. — Vol. 110. — P. 1–24.

14. Alvarino J.M.R. Reproductive performance of male rabbits// World Rabbit Sci. — 2000. — Vol. 8. — Suppl.1. — P.13–35.

15. Bresciania C. Evaluation of effectiveness of an innovative semen extender (Formula®) comparing with a traditional extender (Lepus®) for artificial insemination in rabbits does/ C. Bresciania, A. Bianchera, P.M. Mazzantic, M. Bertocchia, R. Bettini // Italian J. Anim. Sci. — 2016. — Vol.15. — Suppl.4. http://dx.doi.org/10.1080/1828051X.2016.1221747

16. Di Iorio M. First semen cryobank of Italian rabbit breeds/ M. Di Iorio, G. Rusco, M. Schiavitto et al. // Italian J. Anim. Sci. — 2018. — Vol.18. — Suppl.1. — P.157.

17. Rebollara P.G. Ovulating induction methods in rabbit does: The pituitary and ovarian responses/ P.G. Rebollara, A. Dal Bosco, P. Millán et al.// Theriogenology. — 2012. — Vol. 77 (Iss. 2). — P. 292–298.

18. Roca J. Viability and fertility of rabbit spermatozoa diluted in Tris-buffer extenders and stored at 150C/ J. Roca, S. Martınez, J.M. Vázquez et al. //Animal Reprod. Sci. — 2000. — Vol. 64. — 103–112.