Изучение резистентности коров при заболевании маститом в зависимости от возраста лактации

Актуальность. Маточное поголовье и молодняк крупного рогатого скота в условиях промышленной технологии ведения животноводства испытывают повышенную антигенную нагрузку, что приводит к нарушениям в иммунном статусе и развитию воспалительных процессов, проявляющихся эндометритами и маститами, диарейным и респираторным синдромами. Актуальным было провести комплексную оценку иммунологической реактивности организма животного по состоянию резистентности у крупного рогатого скота при клиническом и субклиническом мастите в зависимости от возраста лактации. В результате комплексно проведенных исследований изучена специфическая и неспецифическая реактивность организма крупного рогатого скота в разные периоды лактации.

Методы. Объектом исследования были коровы черно-пестрой голштинизированной породы (n = 450). Группы животных формировали по возрасту лактации:1-я лактация, 2–3-я лактация, 3–4-я лактация, и по состоянию здоровья: клинически здоровые животные, с субклиническим маститом и клиническим маститом. У коров отбирали образцы молока для подсчета количества соматических клеток и кровь для определения количественного содержания иммуноглобулина IgG и показателей неспецифической резистентности.

Результаты. Установлено, что при мастите у коров разного возраста лактации наблюдались практически идентичные изменения иммунного статуса. Количественное определение уровня IgG в сыворотке крови животных является основой оценки напряженности иммунитета крупного рогатого скота. Иммунный статус у клинически здоровых животных характеризовался более высоким уровнем общего количества иммуноглобулина IgG в сыворотке крови (составил 22,25±0,70 мг/мл), тогда как у коров с субклинической формой мастита уровень иммуноглобулина IgG снизился на 12,3%, с клинической формой мастита — на 17,2%. Также результаты показали, что у коров разных лактаций с субклиническим и клиническим маститом существенно возрастает бактерицидная (на 10,8%) и лизоцимная активность крови (на 8,22%). У коров с клиническим маститом — на 8,6% и 9,7% соответственно, по сравнению с показателями в группах здоровых животных. Таким образом, маститы, проходящие в острой и подострой форме, приводят к снижению резистентности организма коров.

1. Жумашев Ж.Ж., Камбаров А.А., Токтарова Г.К. Белковый и иммуноглобулиновый состав сыворотки крови новорожденных ягнят и телят до приема молозива. Сельское, лесное и водное хозяйство. 2014.9: 16-18.

2. Авдеенко В.С. Рекомендации по диагностики, терапии и профилактики мастита у коров. – Саратов. 2009. 71 с.

3. Акназаров Б.К., Джангазиев М.М., Ибраимов О.С. Профилактика маститов и послеродовых заболеваний матки у коров. Современные проблемы ветеринарного обеспечения репродуктивного здоровья животных: материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 100-летию со дня рождения проф. В.А. Акатова. Воронеж, 27–29 мая 2009 – Воронеж: Истоки. 2009.: 38–41.

4. Масьянов Ю.Н., А.Г. Шахов, С.М. Сулейманов, И.С. Толкачев Иммунитет и морфологические изменения в молочной железе у коров при мастите. Вестник Россельхозакадемии. 2009. 4.: 69-71.

5. Желавский Н.Н. Изменение функционального состояния клеточного иммунитета и апоптоз иммунокомпетентных клеток при мастите коров. Современные проблемы ветеринарного акушерства и биотехнологии воспроизводства животных: материалы Междунар. науч.- практ. конф., посвящ. 85-летию со дня рождения Г.А. Черемисова и 50-летию созд. Воронежской школы веет. акушер. Воронеж: Истоки. 2012.: 201- 204.

6. Капай Н.А., Филиппова Е.Е., Г.К. Хелвет Мастит. Пошаговое решение проблемы. Ветеринария. 2019.5.: 2-3.

7. Леонтьев Н.Н. Естественная резистентность и состояние здоровья молочной железы коров. Сб. научных трудов ВНИИВС.- М., 1978. т.62. :122-125.

8. Шахов А.Г., Ю.Н. Масьянов Нормализация обмена веществ и иммунный статус крупного рогатого скота. Ветеринарный консультант. 2006. 19.:15.

9. Воскобойников В.М. Маститы коров. Минск: Ураджай. 1981.149с.

10. Шипилов В.С., В.П.Копытин Профилактика болезней молочной железы у коров первотелок. Молочное и мясное скотоводство. 1988. №2.: С.56-61.

11. Методы ветеринарной классической лабораторной диагностики: Справочник/Под.Ред.Проф. И.П. Кондрахина. М. Колос С. 2004.: 492с.

12. Ebergart R.J. Mastitis and the dry period. Proc. 15 Annu. Convention Amer. Assc. Bovine Practitioners. 1982.: 63-64.

13. Cooray R. Use of bovine myeloperoxidase as indicator of mastitis in dairy cattle. Veterinary Microbiology.1994.V42.(I 4).: 317-326.

14. Jones G.M. Impact on producer and processor. J. Dairy Sc., 1086. V.69.( 6).: 1699-1707.

15. Cooray R., L. Hakansson Defective Polymorphonuclear Neutrophil Function in Dairy Cows Showing Enhanced Susceptibility to Intramammary Infections. Zoonoses and Public Health. 1995. V42.(1-10).: 625-632.

16. Mancini, G., Carbonara O., Heremans J.F. Immunochemical quantitation of antigens by single radial immunodiffusion. Immunochem. 1965. 2.: 235- 254.