Влияние липидной фракции личинок Чёрной львинки на продуктивность, резистентность и обменные процессы у телят молочного периода выращивания

Актуальность. Имеются данные о повышении иммунитета у животных при скармливании им компонентов из личинок насекомых.

Цели исследований – изучение некоторых сторон состава и бактерицидных свойств липидной фракции, полученной из биомассы личинок Чёрной львинки (ЛЧЛ-лф); установление эффективности использования ЛЧЛ-лф в качестве добавки к рациону телят молочного периода выращивания.

Методика. Научно-хозяйственный опыт по изучению действия различных уровней использования липидной фракции, полученной из биомассы личинок Чёрной львинки, в рационах телят молочного (с 59-го по 123-й день) периода выращивания проведен в АО «Молоди» Московской области. Животным контрольной группы скармливался сбалансированный по энергии и питательным веществам рацион, 1-й опытной дополнительно к основному рациону ежедневно (индивидуально) в утреннее кормление скармливали 5 г ЛЧЛ-лф, 2-й опытной – 10 г ЛЧЛ-лф.

Результаты. Жирнокислотный состав ЛЧЛ-лф: сумма насыщенных ЖК – 85,9%, лауриновой кислоты – 55,6%. Антимикробные свойства экстракта из ЛЧЛ-лф в значительной степени отмечены в отношении грамположительных бактерий. Отмечено, что скармливание личинок в диетах молодняка улучшало бактерицидные свойства сыворотки крови подопытных животных – с 31,4 до 42,9–48,6% (р < 0,05). Более высоким в крови животных 2-й группы было содержание эритроцитов (11,6% против 10,3 × 10¹²/л в контроле, p = 0,08) и гематокрита (40,9 против 37,1% в контроле, p = 0,02), что свидетельствует о повышении окислительно-восстановительной способности крови подопытных животных. В крови животных опытных групп повышалось содержание свободных водорастворимых антиоксидантов – с 14,8 мг/л в контроле до 17,8 мг/л (p = 0,08) и до 15,7 мг/л (p = 0,39) в крови животных опытных групп, 1-й и 2-й соответственно. В целом за двухмесячный период опыта увеличение ССП составило: в 1-й группе – 8,4%, во 2-й группе – 18,7% по сравнению с контролем (703,1–769,5 г против 648,4 г, p < 0,05).

1. Makkar H.P.S., Tran G., Heuzé V., Ankers P. State-of-the-art on use of insects as animal feed. Animal Feed Science and Technology. 2014; 197: 1–33. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2014.07.008

2. Benzertiha A. et al. Tenebrio molitor and Zophobas morio full-fat meals as functional feed additives affect broiler chickens’ growth performance and immune system traits. Poultry Science. 2020; 99(1): 196–206. https://doi.org/10.3382/ps/pez450

3. Schiavone A. et al. Nutritional value of a partially defatted and a highly defatted black soldier fly larvae (Hermetia illucens L.) meal for broiler chickens: Apparent nutrient digestibility, apparent metabolizable energy and apparent ileal amino acid digestibility. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2017; 8: 51. https://doi.org/10.1186/s40104-017-0181-5

4. Iaconisi V. et al. Dietary inclusion of Tenebrio molitor larvae meal: Effects on growth performance and final quality treats of blackspot sea bream (Pagellus bogaraveo). Aquaculture. 2017; 476: 49–58. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.04.007

5. Secci G., Moniello G., Gasco L., Bovera F., Parisi G. Barbary partridge meat quality as affected by Hermetia illucens and Tenebrio molitor larva meals in feeds. Food Research International. 2018; 112: 291–298. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2018.06.045

6. Allegratti G., Talamini E., Schmidt V., Bogorni P.C., Ortega E. Insect as feed: An emergy assessment of insect meal as a sustainable protein source for the Brazilian poultry industry. Journal of Cleaner Production. 2018; 171: 403–412. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2017.09.244

7. Hussein M. et al. Sustainable production of housefly (Musca domestica) larvae as a protein-rich feed ingredient by utilizing cattle manure. PLoS ONE. 2017; 12(2): e0171708. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0171708

8. Gasco L., Finke M., van Huis A. Can diets containing insects promote animal health?. Journal of Insects as Food and Feed. 2018; 4(1): 1–4. https://doi.org/10.3920/JIFF2018.x001

9. Yu M., Li Z., Chen W., Rong T., Wang G., Ma X. Hermetia illucens larvae as a potential dietary protein source altered the microbiota and modulated mucosal immune status in the colon of finishing pigs. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2019; 10: 50. https://doi.org/10.1186/s40104-019-0358-1

10. Bergin D., Reeves E.P., Renwick J., Wientjes F.B., Kavanagh K. Superoxide Production in Galleria mellonella Hemocytes: Identification of Proteins Homologous to the NADPH Oxidase Complex of Human Neutrophils. Infection and Immunity. 2005; 73(7): 4161–4170. https://doi.org/10.1128/IAI.73.7.4161-4170.2005

11. Renwick J., Reeves E.P., Wientjes F.B., Kavanagh K. Translocation of proteins homologous to human neutrophil p47phox and p67phox to the cell membrane in activated hemocytes of Galleria mellonella. Developmental & Comparative Immunology. 2007; 31(4): 347–359. https://doi.org/10.1016/j.dci.2006.06.007

12. Pereira T.C. et al. Recent Advances in the Use of Galleria mellonella Model to Study Immune Responses against Human Pathogens. Journal of Fungi. 2018; 4(4): 128. https://doi.org/10.3390/jof4040128

13. Ushakova N.A. et al. Melanin properties at the different stages towards life cycle of the fly Hermetia illucens. Ukrainian Journal of Ecology. 2017; 7(4): 424–431. https://doi.org/10.15421/2017_13

14. Choi W.H., Jiang M.H. Evaluation of antibacterial activity of hexanedioic acid isolated from Hermetia illucens larvae. Journal of Applied Biomedicine. 2014; 12(3): 179–189. https://doi.org/10.1016/j.jab.2014.01.003

15. Nekrasov R.V. et al. Bioactive Feed Additive for the Prevention of Clostridial Disease in High-Yielding Dairy Cattle. Agriculture. 2023; 13: 786. https://doi.org/10.3390/agriculture13040786

16. Гончаров А. Альфа-моноглицериды эффективно разрушают патогенную микрофлору. Комбикорма. 2020; (1): 113, 114. https://elibrary.ru/rsuqwo

17. Nekrasov R.V. et al. Effect of Black Soldier Fly (Hermetia illucens L.) Fat on Health and Productivity Performance of Dairy Cows. Animals. 2022; 12(16): 2118. https://doi.org/10.3390/ani12162118

18. Rebucci R., Comi M., Ghiringhelli M., Giorgi S., Cheli F., Bontempo V. Lauric acid saponified with calcium ameliorates indices of intestinal function and gut health in weaned piglets. Italian Journal of Animal Science. 2021; 20(1): 1479–1490. https://doi.org/10.1080/1828051X.2021.1944338