Preview

Аграрная наука

Расширенный поиск

Эпизоотическая ситуация по бактериальной почечной болезни (BKD)

https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-377-12-46-52

Аннотация

Актуальность. Бактериальная почечная болезнь (БПБ, BKD, коринеальная почечная инфекция, болезнь Ди), возбудителем которой является грамположительная неспоровая неподвижная бактерия Renibacterium salmoninarum, — это распространенное заболевание рыб семейства лососевых (Salmonidae), которое наносит существенный ущерб производству рыбы в аквакультуре и развитию отрасли, а также снижает численность диких популяций.

Цель данного обзора — являлся анализ эпизоотической ситуации по бактериальной почечной болезни (BKD) среди диких популяций лососевых и рыб в аквакультуре на территории Российской Федерации, а также в других странах.

В статье представлена информация по заболеваемости BKD в мире и на территории Российской Федерации за 1933–2023 гг., показаны данные по распространению болезни среди диких популяций и выращиваемых рыб в аквакультуре, описаны возможные пути передачи, нативные и предполагаемые векторы-переносчики инфекции.

Методы. Рассмотрены меры контроля роста заболеваемости BKD в мире и на территории Российской Федерации. В связи с отсутствием эффективной вакцины и способа лечения наиболее доступным методом контроля распространения болезни является своевременная диагностика. Указаны методы, разработанные для быстрой и эффективной диагностики сотрудниками лаборатории ихтиопатологии ФНЦ ВИЭВ РАН: реакция микроагглютинации (РМА) и полимеразно-цепная реакция в реальном времени (ПЦР-РВ).

Результаты. В отличие от классических бактериологических методов, данные реакции позволяют провести индикацию и идентификацию возбудителя BKD в течение 24 часов.

Об авторах

Д. А. Алонцева
Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Россия

Дарья Александровна Алонцева, младший научный сотрудник

Рязанский пр-т, 24, Москва, 109428



А. Е. Дрошнев
Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Россия

Алексей Евгеньевич Дрошнев кандидат биологических наук 

Рязанский пр-т, 24, Москва, 109428



Е. А. Завьялова
Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Россия

Елена Александровна Завьялова, кандидат биологических наук

Рязанский пр-т, 24, Москва, 109428



Список литературы

1. Droshnev A.E., Bulina K.Y., Alontseva D.A., Belimenko V.V., Zavyalova E.A. Microbiological monitoring of causative agents of infectious diseases of salmons in the Northwest region. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2019; 315(7): 72007. https://doi.org/10.1088/1755-1315/315/7/072007

2. Evelyn T.P.T. Bacterial Kidney Disease – BKD. Inglis V., Roberts R.J., Bromage N.R. (eds.). Bacterial Diseases of Fish. Oxford, UK: Blackwell Scientific Publications. 1993; 177–195.

3. Рахконен Р., Веннерстрем П., Ринтамяки П., Каннел Р. Здоровая рыба. Профилактика, диагностика и лечение болезней. 2-е изд. Хельсинки: НИИ Охотничьего и рыбного хозяйства Финляндии. 2013: 177. ISBN 978-951-776-935-8

4. Mackie T.J., Arkwright J.A., Pryce-Tannatt T.E., Mottram J.C., Johnston W.P., Menzies W.J.M. Second Interim Report of the Furunculosis Committee. Edinburgh: HMSO. 1933; 81.

5. Belding D.L., Merrill B. A Preliminary Report upon a Hatchery Disease of the Salmonidae. Transactions of the American Fisheries Society. 1935; 65(1): 76–84. https://doi.org/10.1577/1548-8659(1935)65[76:APRUAH]2.0.CO;2

6. Rucker R.R., Earp B.J., Ordal E.J. Infectious Diseases of Pacific Salmon. Transactions of the American Fisheries Society. 1954; 83(1): 297–312. https://doi.org/10.1577/1548-8659(1953)83[297:IDOPS]2.0.CO;2

7. Ordal E.J., Earp B.J. Cultivation and Transmission of Etiological Agent of Kidney Disease in Salmonid Fishes. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 1956; 92(1): 85–88. https://doi.org/10.3181/00379727-92-2239

8. Balfry S.K., Albright L.J., Evelyn T.P.T. Horizontal transfer of Renibacterium salmoninarum among farmed salmonids via the fecal-oral route. Diseases of Aquatic Organisms. 1996; 25(1–2): 63–69. https://doi.org/10.3354/dao025063

9. Bruno D.W. Prevalence and diagnosis of bacterial kidney disease (BKD) in Scotland between 1990 and 2002. Diseases of Aquatic Organisms. 2004; 59(2): 125–130. https://doi.org/10.3354/dao059125

10. Johansen L.-H., Jensen I., Mikkelsen H., Bjørn P.-A., Jansen P.A., Bergh Ø. Disease interaction and pathogens exchange between wild and farmed fish populations with special reference to Norway. Aquaculture. 2011; 315(3–4): 167–186. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.02.014

11. Boerlage A.S., Stryhn H., Sanchez J., Hammell K.L. Case definition for clinical and subclinical bacterial kidney disease (BKD) in Atlantic Salmon (Salmo salar L.) in New Brunswick, Canada. Journal of Fish Diseases. 2017; 40(3): 395–409. https://doi.org/10.1111/jfd.12521

12. Jónsdóttir H., Malmquist H.J., Snorrason S.S., Gudbergsson G., Gudmundsdóttir S. Epidemiology of Renibacterium salmoninarum in wild Arctic charr and brown trout in Iceland. Journal of Fish Biology. 1998; 53(2): 322–339. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1998.tb00984.x

13. Suzuki K., Misaka N., Mizuno S., Sasaki Y. Subclinical Infection of Renibacterium salmoninarum in Fry and Juveniles Chum Salmon Oncorhynchus keta in Hokkaido, Japan. Fish Pathology. 2017; 52(2): 89–95. https://doi.org/10.3147/JSFP.52.89

14. Du Y., Hu X., Miao L., Chen J. Current status and development prospects of aquatic vaccines. Frontiers in Immunology. 2022; 13: 1040336. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.1040336

15. Bruneau N.N., Thorburn M.A., Stevenson R.M.W. Occurrence of Aeromonas salmonicida, Renibacterium salmoninarum, and Infectious Pancreatic Necrosis Virus in Ontario Salmonid Populations. Journal of Aquatic Animal Health. 1999; 11(4): 350–357. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1999)011<0350:ooasrs>2.0.co;2

16. Alontseva D.A., Zavyalova E.A., Droshnev A.E., Bulina K.Yu. Screening of bacterial kidney disease in the North-West region of the Russian Federation. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021; 677: 052092. https://doi.org/10.1088/1755-1315/677/5/052092

17. Fryer J.L., Sanders J.E. Bacterial kidney disease of salmonid fish. Annual Review of Microbiology. 1995; 35: 273–298. https://doi.org/10.1146/annurev.mi.35.100181.001421

18. Pfeil-Putzien C., Hoffmann R., Popp W. Preliminary report on the occurrence of bacterial kidney disease in Germany. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 1985; 5(2): 30–31.

19. Kettler S., Pfeil-Putzien C., Hoffmann R. Infection of grayling (Thymallus thymallus) with the agent of bacterial kidney disease (BKD). Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 1986; 6(3): 69–71.

20. Nagai T., Iida Y. Occurrence of Bacterial Kidney Disease in Cultured Ayu. Fish Pathology. 2002; 37(2): 77–81. https://doi.org/10.3147/jsfp.37.77

21. Rimaila-Pärnänen E. First case of bacterial kidney disease (BKD) in whitefish (Coregonus lavaretus) in Finland. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 2002; 22(6): 403–404.

22. Bell G.R., Hoffmann R.W., Brown L.L. Pathology of experimental infections of the sablefish, Anoplopoma fimbria (Pallas), with Renibacterium salmoninarum, the agent of bacterial kidney disease in salmonids. Journal of Fish Diseases. 1990; 13(5): 355–367. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1990.tb00794.x

23. Sakai M., Ogasawara K., Atsuta S., Kobayashi M. Comparative sensitivity of carp, Cyprinus carpio L. and rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, to Renibacterium salmoninarum. Journal of Fish Diseases. 1989; 12(4): 367–372. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1989.tb00325.x

24. Bell G.R., Traxler G.S. Resistance of Pacific lamprey, Lampetra tridentata (Gairdner), to challenge by Renibacterium salmoninarum, the causative agent of kidney disease in salmonids. Journal of Fish Diseases. 1986; 9(3): 277–279. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.1986.tb01014.x

25. Paclibare J.O., Evelyn T.P.T., Albright L.J., Prosperi-Porta L. Clearing of the kidney disease bacterium Renibacterium salmoninarum from seawater by the blue mussel Mytilus edulis, and the status of the mussel as a reservoir of the bacterium. Diseases of Aquatic Organisms. 1994; 18(2): 129–133. https://doi.org/10.3354/dao018129

26. Starliper C.E., Morrison P. Bacterial pathogen contagion studies among freshwater bivalves and salmonid fishes. Journal of Shellfish Research. 2000; 19(1): 251–258.

27. Faisal M. et al. Epidemiological investigation of Renibacterium salmoninarum in three Oncorhynchus spp. in Michigan from 2001 to 2010. Preventive Veterinary Medicine. 2012; 107(3–4): 260–274. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2012.06.003

28. Murray A.G., Munro L.A., Wallace I.S., Allan C.E.T., Peeler E.J., Thrush M.A. Epidemiology of Renibacterium salmoninarum in Scotland and the potential for compartmentalised management of salmon and trout farming areas. Aquaculture. 2012; 324–328: 1–13. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.09.034

29. Lorenzen E., Olesen N.J., Korsholm H., Heuer O.E., Evensen Ø. First demonstration of Renibacterium salmoninarum / BKD in Denmark. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 1998; 17(3–4): 140–144.

30. Pedersen K., Skall H.F., Lassen-Nielsen A.M., Nielsen T.F., Henriksen N.H., Olesen N.J. Surveillance of health status on eight marine rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), farms in Denmark in 2006. Journal of Fish Diseases. 2008; 31(9): 659–667. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2008.00941.x

31. Delghandi M.R., Menanteau-Ledouble S., Waldner K., El-Matbouli M. Renibacterium salmoninarum and Mycobacterium spp.: two bacterial pathogens present at low levels in wildbrown trout (Salmo trutta fario) populations in Austrian rivers. BMC Veterinary Research. 2020; 16: 40. https://doi.org/10.1186/s12917-020-2260-7

32. Mora-Salas P. et al. Method for lineage typing of epidemic Renibacterium salmoninarum in Chilean salmon farms. Journal of Fish Diseases. 2023; 46(5): 499–506. https://doi.org/10.1111/jfd.13761

33. Bayliss S.C. et al. Genomic epidemiology of the commercially important pathogen Renibacterium salmoninarum within the Chilean salmon industry. Microbial Genomics. 2018; 4(9). https://doi.org/10.1099/mgen.0.000201

34. Sakai M., Atsuta S., Kobayashi M. Susceptibility of Five Salmonid Fishes to Renibacterium salmoninarum. Fish Pathology. 1991; 26(3): 159–160. https://doi.org/10.3147/jsfp.26.159

35. Matsui T., Nishizawa T., Yoshimizu M. Modification of KDM-2 with Culture-spent Medium for Isolation of Renibacterium salmoninarum. Fish Pathology. 2009; 44(3): 139–144. https://doi.org/10.3147/jsfp.44.139

36. Suzuki K., Misaka N., Mizuno S., Sasaki Y. Subclinical Infection of Renibacterium salmoninarum in Fry and Juveniles Chum Salmon Oncorhynchus keta in Hokkaido, Japan. Fish Pathology. 2017; 52(2): 89–95. https://doi.org/10.3147/jsfp.52.89

37. Suzuki K., Mizuno S., Katsumata Y., Misaka N., Miyamoto M., Sasaki Y. Asymptomatic Infection of Renibacterium salmoninarum in Hatchery-reared Juvenile Chum Salmon Oncorhynchus keta Resulted in Mass Mortalities after Long-term Rearing. Fish Pathology. 2018; 53(1): 40–43. https://doi.org/10.3147/jsfp.53.40

38. Yoshimizu M. Disease problems of salmonid fish in Japan caused by international trade. Revue Scientifique et Technique. 1996; 15(2): 533–549. https://doi.org/10.20506/rst.15.2.937

39. Рудакова С.Л. Обеспечение ихтиопатологического благополучия объектов и хозяйств аквакультуры России. Труды ВНИРО. 2016; 162: 104–115. https://elibrary.ru/xagkmn

40. Завьялова Е.А., Дрошнев А.Е., Алонцева Д.А., Булина К.Ю., Карпова М.А. Обнаружение Renibacterium salmoninarum у лососевых рыб с помощью молекулярно-биологических и микробиологических методов. Ветеринария. 2023; (5): 24–31. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2023.26.5.24-30

41. Sergeenko N.V., Ustimenko E.A., Eliseikina M.G., Kuhlevskiy A.D., Bochkova E.V., Ryazanova T.V. First report of bacterial kidney disease in coho salmon Oncorhynchus kisutch in Russia. Diseases of aquatic organisms. 2020; 140: 31–36. https://doi.org/10.3354/dao03486

42. Salonius K., Siderakis C., MacKinon A. M., Griffiths S. G. Use of Arthrobacter davidanieli as a live vaccine against Renibacterium salmoninarum and Piscirickettsia salmonis in salmonids. Developments in Biologicals. 2005; 121:189-197.

43. Alcorn S., Murray A. L., Pascho R. J., Varney J. A cohabitation challenge to compare the efficacies of vaccines for bacterial kidney disease (BKD) in chinook salmon Oncorhynchus tshawytscha. Dis Aquat Org. 2005; 63:151-160.

44. Evelyn T.P.T. An improved growth medium for the kidney disease bacterium and some notes on using the medium. Bulletin de L’Office International des Epizooties. 1977; 87:511–513.

45. Austin B., Embly T. M., Goodfellow M. Selective isolation of Renibactenum salmonlnarum. FEMS Microblol Lett. 1983; 17:111-114.

46. Bandin I., Heinen P., Brown L.L., Toranzo A.E. Comparison of different ELISA kits for detecting Renibacterium salmoninarum. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 1996; 16:19–22.

47. Chase D.M., Pascho R. J. Development of a nested polymerase chain reaction for amplification of a sequence of the p57 gene of Renibacterium salmoninarum that provides a highly sensitive method for detection of the bacterium in salmonid kidney. Dis Aquat Org. 1998;34:223–229

48. Chase D.M., Elliot D.G., Pascho R.J. Detection and quantification of Renibacterium salmoninarum DNA in salmonid tissues by real-time quantitative polymerase chain reaction analysis. J Vet Diagn Invest. 2006; 18:375–380.

49. Halaihel N. et al. A new real time PCR-based assay for diagnosing Renibacterium salmoninarum in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and comparison with other techniques. Journal of Microbiological Methods. 2009; 6:75–80.

50. Etchegaray J.P., Martinez M.A., Krauskopf M., Leon, G. Molecular cloning of Renibacterium salmoninarum DNA fragments. FEMS Microbiology Letters. 1991; 79:61–64.

51. Алонцева Д.А., Завьялова Е.А., Дрошнев А.Е., Карпова М.А., Булина К.Ю. Развитие симптомокомплекса у кроликов при получении антисыворотки против возбудителя бактериальной почечной болезни лососевых рыб (BKD). Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2022; (2): 21–28. https://doi.org/10.36871/vet.zoo.bio.202202003

52. Алонцева Д.А., Дрошнев А.Е., Завьялова Е.А. Разработка ПЦР в режиме реального времени для выявления и идентификации возбудителя бактериальной почечной болезни лососевых рыб. Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2023; (7): 34–41. https://doi.org/10.36871/vet.zoo.bio.202307004


Рецензия

Для цитирования:


Алонцева Д.А., Дрошнев А.Е., Завьялова Е.А. Эпизоотическая ситуация по бактериальной почечной болезни (BKD). Аграрная наука. 2023;(12):46-52. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-377-12-46-52

For citation:


Alontseva D.A., Droshnev A.E., Zavyalova E.A. Epizootic situation of bacterial kidney disease (BKD). Agrarian science. 2023;(12):46-52. (In Russ.) https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-377-12-46-52

Просмотров: 250


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0869-8155 (Print)
ISSN 2686-701X (Online)
X