Иммунологический статус свиноматок в ходе репродуктивного цикла и коррекция его состояния биостимулятором антигенонаправленного действия

Актуальность. Репродуктивная недостаточность свиноматок, ассоциированная с цирковирусной инфекцией, широко распространена в свиноводческих предприятиях. Поэтому решающее значение в формировании репродуктивного потенциала свиноматок имеет повышение эффективности иммунитета, формирующегося у животных в поствакцинальный период.

Методы. Работа выполнена на свиноматках, которых  в конце подсосного периода при отъеме поросят (на 21-е сутки после родов) вакцинировали против ЦВС-2 вакциной «Ингельвак ЦиркоФЛЕКС» (Германия). В опытной группе вакцинацию сочетали с двухкратным введением иммунобиостимулятора направленного действия «Трансфер Фактор» в дозе 5 мл на голову с интервалом 7 дней (второе введение «Трансфер Фактора» проводилось при вакцинации). Эффективность поствакцинального иммунитета оценивали по результатам иммунологических, зоотехнических и статистических исследований.

Результаты. Установлено, что формирование поствакцинального иммунитета у свиноматок контрольной группы происходит в условиях  увеличения в крови концентрации иммуноглобулинов (∑G + M + A) в 1,25–1,59 раза за счет IgG и IgМ, уменьшения абсолютного количества Т- и В-лимфоцитов на 11,84–15,51% и 14,12–17,51% при сохранении их процентной доли в общем пуле лимфоцитов, снижения уровня Т-хелперов на 34,27–36,47 на фоне прироста цитотоксических лимфоцитов и киллеров на 4,47–66,67%, что определяет выход поросят на один опорос в количестве 12,5 голов и мертворожденность на уровне 9,67%. Сочетание вакцинации с введением специфического иммунобиостимулятора направленного действия у свиноматок опытной группы определяет в поствакцинальный период; прирост концентрации иммуноглобулинов в крови на 24,93–71,56% за счет IgG; уменьшение количества Т-лимфоцитов на 19,50–23,76% на фоне увеличения В-лимфоцитов на 20,00–21,25%; сохранение абсолютного числа Т-хелперов и уменьшение количества цитотоксических лимфоцитов и киллеров в 2,14–3,00 раза, способствуя снижению мертворожденности на 3,24% и повышению выхода поросят на один опорос до 13,0 голов.

1. Стрижак Т.А., Мартынюк И.Н., Сушко А.Б., Стрижак А.В., Старовойтова А.Н., Старовойтова Н.Н. Плановая репродукция стада свиней. Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства. Горки: БГСХА. 2022; 25(1): 47–53. https://elibrary.ru/wyhaiv

2. Hines E.A. et al. The impact of dietary supplementation of arginine during gestation in a commercial swine herd: II. Offspring performance. Journal of Animal Science. 2019; 97(9): 3626–3635. https://doi.org/10.1093/jas/skz214

3. Song H. et al. Effects of Dietary Monoglyceride and Diglyceride Supplementation on the Performance, Milk Composition, and Immune Status of Sows During Late Gestation and Lactation. Frontiers in Veterinary Science. 2021; 8: 714068. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.714068

4. Liu Y. et al. Effects of dietary soluble or insoluble fiber intake in late gestation on litter performance, milk composition, immune function, and redox status of sows around parturition. Journal of Animal Science. 2020; 98(10): skaa303. https://doi.org/10.1093/jas/skaa303

5. Бригадиров Ю.Н., Коцарев В.Н., Шапошников И.Т., Лобанов А.Э., Фалькова Ю.О. Некоторые показатели иммунобиохимического статуса свиноматок при воспалительных процессах в репродуктивных органах. Российский ветеринарный журнал. 2018; (1): 9–11. https://elibrary.ru/yvwcbo

6. Бурков П.В., Щербаков П.Н., Дерхо М.А., Ребезов М.Б. Особенности формирования поствакцинального иммунитета против цирковирусной инфекции свиней и его коррекции. Аграрная наука. 2022; (10): 32–37. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-363-10-32-37

7. Dvorak C.M., Lilla M.P., Baker S.R., Murtaugh M.P. Multiple routes of porcine circovirus type 2 transmission to piglets in the presence of maternal immunity. Veterinary Microbiology. 2013; 66(3–4): 365–374. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2013.06.011

8. Burkov P.V. et al. Pathological features of the lungs and liver of piglets under conditions of constant vaccination of livestock against circovirus infection. Theory and Practice of Meat Processing. 2023; 8(1): 4–11. https://doi.org/10.21323/2414-438X-2023-8-1-4-11

9. López-Lorenzo G. et al. Presence of Porcine Circovirus Type 2 in the Environment of Farm Facilities without Pigs in Long Term-Vaccinated Farrow-to-Wean Farms. Animals. 2022; 12(24): 3515. https://doi.org/10.3390/ani12243515

10. Mai J. et al. High Co-infection Status of Novel Porcine Parvovirus 7 With Porcine Circovirus 3 in Sows That Experienced Reproductive Failure. Frontiers in Veterinary Science. 2021; 8: 695553. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.695553

11. Palinski R. et al. A Novel Porcine Circovirus Distantly Related to Known Circoviruses Is Associated with Porcine Dermatitis and Nephropathy Syndrome and Reproductive Failure. Journal of Virology. 2016; 91(1): e01879-16. https://doi.org/10.1128/JVI.01879-16

12. Oropeza-Moe M., Oropeza Delgado A.J, Framstad T. Porcine circovirus type 2 associated reproductive failure in a specific pathogen free (SPF) piglet producing herd in Norway: a case report. Porcine Health Management. 2017; 3: 25. https://doi.org/10.1186/s40813-017-0072-3

13. Tochetto C. et al. Investigation on porcine circovirus type 3 in serum of farrowing sows with stillbirths. Microbial Pathogenesis. 2020; 149: 104316. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2020.104316

14. Garcia-Morante B. et al. A novel subunit vaccine based on the viral protein 2 of porcine parvovirus: safety profile in bred pigs at different stages of the reproduction cycle and in offspring. Heliyon. 2019; 5(11): e02593. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e02593

15. Derkho M.A., Burkov P.V., Shcherbakov P.N., Rebezov M.B., Stepanova K.V., Ansori A.M. Contribution of some immunological and metabolic factors to formation of piglets’ post-vaccination immunity. Theory and practice of meat processing. 2022; 7(3): 193–199. https://doi.org/10.21323/2414-438X-2022-7-3-193-199

16. Reif J. et al. Reproductive failure in an Austrian piglet-producing farm due to porcine circovirus genotype 2d. Acta Veterinaria Hungarica. 2022; 70(2): 149–155. https://doi.org/10.1556/004.2022.00010

17. Ouyang K. et al. Evaluation of humoral immune status in porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) infected sows under field conditions. Veterinary Research. 2015; 46: 140. https://doi.org/10.1186/s13567-015-0285-x

18. Czyżewska-Dors E., Wierzchosławski K., Pomorska-Mól M. Serum concentrations of immunoglobulins and cortisol around parturition in clinically healthy sows and sows with postpartum dysgalactia syndrome (PDS). Journal of Veterinary Research. 2022; 66(2): 245–250. https://doi.org/10.2478/jvetres-2022-0034

19. Maciag S.S. et al. On the influence of the source of porcine colostrum in the development of early immune ontogeny in piglets. Scientific Reports. 2022; 12: 15630. https://doi.org/10.1038/s41598-022-20082-1

20. Бурков П.В., Дерхо М.А., Ребезов М.Б., Щербаков П.Н. Цирковирус как фактор, контролирующий эффективность беременности у свиноматок. Аграрная наука. 2023; (8): 27–35. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-373-8-27-35

21. Peng X. et al. Live yeast supplementation during late gestation and lactation affects reproductive performance, colostrum and milk composition, blood biochemical and immunological parameters of sows. Animal Nutrition. 2020; 6(3): 288–292. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2020.03.001

22. Salmon H., Berri M., Gerdts V., Meurens F. Humoral and cellular factors of maternal immunity in swine. Developmental & Comparative Immunology. 2009; 33(3): 384–393. https://doi.org/10.1016/j.dci.2008.07.007

23. Супрун Е.Н. Динамика иммунного ответа. Аллергология и иммунология в педиатрии. 2014; (2): 35–40. https://elibrary.ru/wxbocr

24. Segura M., Martínez-Miró S., López M.J., Madrid J., Hernández F. Effect of Parity on Reproductive Performance and Composition of Sow Colostrum during First 24 h Postpartum. Animals. 2020; 10(10): 1853. https://doi.org/10.3390/ani10101853

25. Turula H., Wobus C.E. The Role of the Polymeric Immunoglobulin Receptor and Secretory Immunoglobulins during Mucosal Infection and Immunity. Viruses. 2018; 10(5): 237. https://doi.org/10.3390/v10050237

26. Pearce E.L., Poffenberger M.C., Chang C.-H., Jones R.G. Fueling Immunity: Insights into Metabolism and Lymphocyte Function. Science. 2013; 342(6155): 1242454. https://doi.org/10.1126/science.1242454

27. Kono M., Takagi Y., Kawauchi S., Wada A., Morikawa T., Funakoshi K. Non-activated T- and B-lymphocytes become morphologically distinguishable after detergent treatment. Cytometry Part A. 2013; 83A(4): 396–402. https://doi.org/10.1002/cyto.a.22262

28. Del Zotto G. et al. Comprehensive Phenotyping of Peripheral Blood T-Lymphocytes in Healthy Mice. Cytometry Part A. 2021; 99(3): 243–250. https://doi.org/10.1002/cyto.a.24246

29. Кудрявцев И.В. и др. Фенотипическая характеристика цитотоксических Т-лимфоцитов: регуляторные и эффекторные молекулы. Медицинская иммунология. 2018; 20(2): 227–240. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2018-2-227-240

30. Tangye S.G., Brink R., Goodnow C.C., Phan T.G. SnapShot: Interactions between B-Cells and T-Cells. Cell. 2015; 162(4): 926–926.e1. https://doi.org/10.1016/j.cell.2015.07.055

31. Соколов Д.И., Селютин А.В., Лесничия М.В., Аржанова О.Н., Сельков С.А. Субпопуляционный состав лимфоцитов периферической крови беременных женщин с гестозом. Журнал акушерства и женских болезней. 2007; 56(4): 17–23. https://elibrary.ru/ijjurl

32. Abu-Raya B., Michalski C., Sadarangani M., Lavoie P.M. Maternal Immunological Adaptation During Normal Pregnancy. Frontiers in Immunology. 2020; 11: 575197. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.575197

33. Sujino T., Kanai T. Development, Competition and Plasticity of the T-lymph cells in inflammatory bowel disease. Japanese Journal of Clinical Immunology. 2012; 35(5): 399–411 (на япон. яз.). https://doi.org/10.2177/jsci.35.399

34. Grün V., Schmucker S., Schalk C., Flauger B., Stefanski V. Characterization of the adaptive immune response following immunization in pregnant sows (Sus scrofa) kept in two different housing systems. Journal of Animal Science. 2014; 92(8): 3388–3397. https://doi.org/10.2527/jas.2013-7531

35. Schalk C., Pfaffinger B., Schmucker S., Weiler U., Stefanski V. Pregnancy-Associated Alterations of Peripheral Blood Immune Cell Numbers in Domestic Sows Are Modified by Social Rank. Animals. 2019; 9(3): 112. https://doi.org/10.3390/ani9030112

36. Sharma R., Saikumar G. Porcine parvovirus- and porcine circovirus 2-associated reproductive failure and neonatal mortality in crossbred Indian pigs. Tropical Animal Health and Production. 2010; 42(3): 515–522. https://doi.org/10.1007/s11250-009-9454-0

37. Eddicks M. et al. Examination on the Occurrence of Coinfections in Diagnostic Transmittals in Cases of Stillbirth, Mummification, Embryonic Death, and Infertility (SMEDI) Syndrome in Germany. Microorganisms. 2023; 11(7): 1675. https://doi.org/10.3390/microorganisms11071675