Показатели тест-растения при обработке модифицированными биофунгицидами

Актуальность. Изучение потенциала тест-растений заключается в определении индикаторных показателей, которые отражают качество семенного материала и необходимое его количество при производственных работах.
Методы. Объектами исследований являются модифицированные биофунгициды, созданные на основе микроскопического гриба Trichoderma viride и природных минералов: диатомита, глауконита, сапропеля, цеолита. 
Оценка потенциала тест-растения (яровая пшеница сорта Ульяновская 105) при обработке модифицированными биофунгицидами проведена на основании таких показателей, как энергия прорастания и всхожесть семян, биометрические данные (длина проростка и корешка) и биомасса (масса проростка и корешка). 
Результаты. Установлено, что обработка семян созданными биофунгицидами положительно влияет на энергию прорастания (82,0–96,0%) и всхожесть (87,0–96,0%) изучаемого тест-растения. Во всех опытных вариантах длина проростка в среднем на 11,0% выше по сравнению с контролем. Максимальные значения этого показателя отмечены в вариантах при обработке семян яровой пшеницы биофунгицидом на основе T. viride (на 18,59%), а также при комплексной обработке T. viride с цеолитом фракции 0,04 мм (на 21,70%) и с диатомитом (на 12,28%). Отмечена и стимуляция развития корневой системы на 8,71–21,13%. Во всех опытных вариантах обработка семян новыми биофунгицидами стимулирует образование биомассы тест-растения. Лучшие значения отмечены в вариантах с обработкой T. viride и T. viride с цеолитом (фракция 0,04 мм), где прибавка массы проростка к контролю составляет 25,67% и 20,86%, а массы корешка — 25,23% и 18,39% соответственно. Применение модифицированных биофунгицидов на основе микромицета T. viride и природных минералов перспективно для получения экологически чистой продукции растениеводства.

1. Новикова И.И., Титова Ю.А., Бойкова И.В., Зейрук В.Н., Краснобаева И.Л., Серова Т.А. Биологическое обоснование оптимизации препаративных форм биопрепаратов на основе микробов-антагонистов для контроля популяций фитопатогенных грибов и бактерий — возбудителей болезней растений. Вестник защиты растений. 2017; (3): 16–23. https://www.elibrary.ru/wukmgx

2. Vicente I., Baroncelli R., Hermosa R., Monte E., Vannacci G., Sarrocco S. Role and genetic basis of specialized secondary metabolites in Trichoderma ecophysiology. Fungal Biology Reviews. 2022; 39: 83–99. https://doi.org/10.1016/j.fbr.2021.12.004

3. Waqas M. et al. Endophytic Fungi Produce Gibberellins and Indoleacetic Acid and Promotes Host-Plant Growth during Stress. Molecules. 2012; 17(9): 10754–10773. https://doi.org/10.3390/molecules170910754

4. Голованова Т.И., Гаевский Н.А., Валиуллина А.Ф., Литовка Ю.А. Влияние спор Trichoderma asperellum и метаболитов Fusarium sporotrichioides на ростовые процессы и фотосинтетический аппарат пшеницы. Микология и фитопатология. 2020; 54(2): 134–142. https://doi.org/10.31857/S0026364820020038

5. Голованова Т.И., Долинская Е.В., Сичкарук Е.А. Роль грибов рода Trichoderma в повышении урожайности пшеницы и ячменя. Вестник КрасГАУ. 2009; (6): 53–58. https://www.elibrary.ru/kxgifr

6. Ramírez-Valdespino C.A., Casas-Flores S., Olmedo-Monfil V. Trichoderma as a Model to Study Effector-Like Molecules. Frontiers in Microbiology. 2019; 10: 1030. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01030

7. Bae S.-J. et al. Trichoderma metabolites as biological control agents against Phytophthora pathogens. Biological Control. 2016; 92: 128–138. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2015.10.005

8. Contreras-Cornejo H.A., del-Val E., Macías-Rodríguez L., Alarcón A., González-Esquivel C.E., Larsen J. Trichoderma atroviride, a maize root associated fungus, increases the parasitism rate of the fall armyworm Spodoptera frugiperda by its natural enemy Campoletis sonorensis. Soil Biology and Biochemistry. 2018; 122: 196–202. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2018.04.013

9. Кириллова Н.И., Дегтярева И.А., Прищепенко Е.А. Перспективы применения модифицированного биофунгицида на основе Trichoderma viride для оздоровления почв. Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2023; 13(1): 107–114. https://www.elibrary.ru/avwqyp

10. Анискина М.В., Волобуева Е.С., Гнеуш А.Н. Изучение влияния различных типов воды на всхожесть и рост семян. Сельскохозяйственный журнал. 2016; (9–1): 257–259. https://www.elibrary.ru/wvjfqb

11. Duarte-Leal Y., Lamz-Piedra A., Martínez-Coca B. Antagonismo in vitro de aislamientos de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt & Nirenberg frente a Sclerotium rolfsii Sacc. Revista de Protección Vegetal. 2017; 32(3): 1–11.

12. Matas-Baca M.A. et al. Morphological and molecular characterization of a new autochthonous Trichoderma sp. isolate and its biocontrol efficacy against Alternaria sp. Saudi Journal of Biological Sciences. 2022; 29(4): 2620–2625. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.12.052

13. Гвоздева М.С., Волкова Г.В. Эффективность биологических фунгицидов против пятнистостей листьев озимой пшеницы в условиях центральной зоны Краснодарского края. Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2021; 16(2): 5–10. https://doi.org/10.12737/2073-0462-2021-5-10