К изучению фауны цикадовых (Hemiptera: Auchenorrhyncha) на виноградниках Краснодарского края

Актуальность. Виноградники Краснодарского края занимают более 31 тыс. га, что составляет около 60% от всех виноградников России. Изучение фитосанитарного состояния ампелоценозов и роли цикадовых в переносе опасных системных заболеваний, таких как фитоплазма почернения древесины, золотистое пожелтение и болезнь Пирса, является важным аспектом поддержания здоровья виноградников.

Цель  исследований —  выявить актуальный видовой состав подотряда цикадовых (Auchenorrhyncha) на виноградниках Краснодарского края. На основе литературных данных и полевых наблюдений оценить потенциальную и реальную вредоносность представителей Auchenorrhyncha как вредителей и переносчиков патогенов виноградной лозы.

Методы. Обловы цикадовых проведены в течение вегетационных сезонов 2023–2024 годов. Материал отбирали с помощью кошения энтомологическим сачком, экспозиции желтых клеевых ловушек, а также методом лова на совмещенное ультрафиолетовое и белое световое излучение. Полевое изучение, а также сбор, обработку и хранение материала насекомых проводили по общепринятым методикам фаунистических исследований.

Результаты. В результате проведенного энтомологического мониторинга на виноградниках Краснодарского края выявлен 51 вид из 9 семейств подотряда Auchenorrhyncha. Выделены виды, имеющие потенциальную и реальную экономическую значимость. Выявлено широкое распространение Scaphoideus titanus и Philaenus spumarius — вектотров опасных карантинных заболеваний золотистого пожелтения и болезни Пирса соответственно. Составлен предварительный перечень потенциальных переносчиков фитоплазмы почернения древесины. Отмечено появление второго поколения Metcalfa pruinosa, что является нехарактерным для этого вида. Предварительно обозначен комплекс видов, вызывающих хлороз винограда. Данное исследование в регионе проведено впервые.

1. Гнездилов В.M. К познанию фаунистических комплексов цикадовых (Homoptera, Cicadina) основных растительных формаций Северо-Западного Кавказа. Энтомологическое обозрение. 2000; 79(4): 794–811. https://elibrary.ru/hvhigf

2. Радионовская Я.Э., Диденко Л.В. Изучение видового разнообразия цикадовых (Auchenorrhyncha) на виноградных насаждениях Крыма. Научные труды Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского института садоводства . и виноградарства. 2015; 8: 205–215. https://elibrary.ru/uiqbvd

3. Хамаева Б.Б., Бондаренко Г.Н., Радионовская Я.Э. Изучение видового состава цикадовых (Auchenorrhyncha) в ампелоценозах Республики Крым. Фитосанитария. Карантин растений. 2022; (3): 45–52. https://doi.org/10.69536/b0075-1551-2188-w

4. Maixner M. Phytoplasma epidemiological systems with multiple plant hosts. Weintraub P.G., Jones P. (eds.). Phytoplasmas: genomes, plant hosts and vectors. CABI. 2010; 213–232. https://doi.org/10.1079/9781845935306.0213

5. Conigliaro G. et al. Epidemiological Investigations and Molecular Characterization of ‘Candidatus Phytoplasma solani’ in Grapevines, Weeds, Vectors and Putative Vectors in Western Sicily (Southern Italy). Pathogens. 2020; 9(11): 918. https://doi.org/10.3390/pathogens9110918

6. Quaglino F. et al. Identification and ecology of alternative insect vectors of ‘Candidatus Phytoplasma solani’ to grapevine. Scientific Reports. 2019; 9: 19522. https://doi.org/10.1038/s41598-019-56076-9

7. Bertaccini A., Weintraub Ph.G., Rao G.P., Mori N. (eds.). Phytoplasmas: Plant Pathogenic Bacteria — II. Transmission and Management of Phytoplasma — Associated Diseases. Singapore: Springer. 2019; X: 258. ISBN 978-981-13-2832-9 https://doi.org/10.1007/978-981-13-2832-9

8. Porotikova E.V., Yurchenko E.G., Vinogradova S.V. First Report of ‘Candidatus Phytoplasma solani’ Associated with Bois Noir on Grapevine (Vitis vinifera) in Krasnodar Region of Russia. Plant Disease. 2020; 104(1): 277. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-19-0508-PDN

9. Юрченко Е.Г. Фитосанитарное состояние виноградников: проблемы и решения. Защита и карантин растений. 2021; (10): 3–9. https://doi.org/10.47528/1026-8634_2021_10_3

10. Benedek P. a szőlő veszedelmes, új betegségét okozó Flavescence dorée (FD) fitoplazma és vektor rovarának (Scaphoideus titanus Ball) elterjedési veszélye Magyarországon. Acta Agronomica Óváriensis. 2014; 56(1): 75–96. https://doi.org/10.17108/AAO.2014.01.06

11. Sicard A. et al. Xylella fastidiosa: Insights into an Emerging Plant Pathogen. Annual Review of.Phytopathology. 2018; 56: 181–202. https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-080417-045849

12. Богоутдинов Д.З., Гирсова Н.В., Кастальева Т.Б. Анализ видового состава растений, поражаемых фитоплазмой группы столбура в России. Таврический вестник аграрной науки. 2020; (3): 26–42. https://www.elibrary.ru/xbtpss

13. Петров В.С., Алейникова Г.Ю., Марморштейн А.А. Агроэкологическое зонирование территории для оптимизации размещения сортов, устойчивого виноградарства и качественного виноделия. Краснодар. 2020; 136. ISBN 978-5-98272-139-6 https://www.elibrary.ru/qsjecd

14. Behrmann S.C., Rinklef A., Lang C., Vilcinskas A., Lee K.-Z. Potato (Solanum tuberosum) as a New Host for Pentastiridius leporinus (Hemiptera: Cixiidae) and Candidatus Arsenophonus Phytopathogenicus. Insects. 2023; 14: 281. https://doi.org/10.3390/insects14030281

15. Yemelyanov A.F. Nomenclatorial changes in the family Cixiidae (Homoptera, Auchenorrhyncha, Fulgoroidea), with fixation of type species of the genus Reptalus Emeljanov, 1971 and description of a new subgenus. Zootaxa. 2020; 4780(1): 197–200. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4780.1.11

16. Jović J., Toševski I. a plea for using the correct taxon names of phytoplasma vectors: a case of Reptalus artemisiae, a vector of ‘Candidatus Phytoplasma solani’. Towards the Prophylactic and Agroecological Control of.grapevine yellows. Proceedings of.the 6th European Bois noir Workshop and 1st International Pro-AECOGY conference. Bordeaux. 2024; 44–45.

17. Кононенко С.В., Юрченко Е.Г. Биоэкологические особенности и вредоносность восковой цикадки (Metcalfa pruinosa Say.) на виноградниках в условиях Западного Предкавказья (Россия). Плодоводство и виноградарство юга России. 2021; 70: 210–221. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-4-70-210-221

18. Danielli A. et al. Detection and molecular characterization of phytoplasmas in the planthopper Metcalfa pruinosa (Say) (Homoptera: Flatidae). Phytopathologia Mediterranea. 1996; 35(1): 62–65.

19. Mergenthaler E., Fodor J., Kiss E., Bodnár D., Kiss B., Viczián O. Biological and molecular evidence for the transmission of aster yellows phytoplasma to French marigold (Tagetes patula) by the flatid planthopper Metcalfa pruinose. Annals of.Applied Biology. 2020; 176(3): 249–256. https://doi.org/10.1111/aab.12582

20. Trivellone V. An online global database of Hemiptera-Phytoplasma-Plant biological interactions. Biodiversity Data Journal. 2019; 7: e32910. https://doi.org/10.3897/BDJ.7.e32910

21. Zhang F., Zhang C., Dai W, Zhang Y. Morphology and histology of the digestive system of the vector leafhopper Psammotettix . striatus (L.) (Hemiptera: Cicadellidae). Micron. 2012; 43(6): 725–738. https://doi.org/10.1016/j.micron.2012.01.004

22. Batlle A., Martínez M.A., Laviña A. Occurrence, Distribution and Epidemiology of Grapevine Yellows in Spain. European Journal of.Plant Pathology. 2000; 106(9): 811–816. https://doi.org/10.1023/A:1008794905178

23. Laviña A., Sabaté J., Batlle A. Spread and transmission of Bois noir phytoplasma in two regions of Spain. 15th Meeting ICVG. Extended abstracts. 2006; 218–220.

24. Sfalanga A., Martini M., Surico G., Bertaccini A. Involvement of phytoplasmas in a decline of Ulmus chenmoui in Central Italy. Forest Pathology. 2002; 32(4–5): 265–275. https://doi.org/10.1046/j.1439-0329.2002.00290.x

25. Girsova N.V. et al. Diverse phytoplasmas associated with potato stolbur and other related potato diseases in Russia. European Journal of.Plant Pathology. 2015; 145(1): 139–153. https://doi.org/10.1007/s10658-015-0824-3

26. Orságová H., Březíková M., Schlesingerová G. Presence of phytoplasmas in hemipterans in Czech vineyards. Bulletin of.Insectology. 2011; 64(S): S119–S120.

27. Gnezdilov V.M., Orlov O.V. First Record of Scaphoideus titanus Ball, 1932 (Hemiptera, Auchenorrhyncha: Cicadellidae: Deltocephalinae), a Vector of flavescence doreé of Grapevine, from Ciscaucasia. Entomological Review. 2022; 102(1): 108–109. https://doi.org/10.1134/S0013873822010092

28. Chuche J., Thiéry D. Biology and ecology of the Flavescence dorée vector Scaphoideus titanus: a review. Agronomy for Sustainable Development. 2014; 34(2): 381–403. https://doi.org/10.1007/s13593-014-0208-7

29. Сугоняев Е.С., Балахнина И.В., Яковук В.А. Японская виноградная цикадка (Arboridia kakogawana Matsumura) — новый потенциально опасный вредитель виноградной лозы на Северном Кавказе. Биологическая защита растений — основа стабилизации агроэкосистем. Материалы докладов Международной научно-практической конференции. Краснодар. 2008; 5: 160–165. https://elibrary.ru/tlkxwj

30. Pérez K.A., Piñol B., Rosete Y.A., Wilson M., Boa E., Lucas J. Transmission of the Phytoplasma Associated with Bunchy Top Symptom of Papaya by Empoasca papaya Oman. Journal of.Phytopathology. 2010; 158(3): 194–196. https://doi.org/10.1111/j.1439-0434.2009.01590.x

31. Galetto L., Marzachì C., Demichelis S., Bosco D. Host Plant Determines the Phytoplasma Transmission Competence of Empoasca decipiens (Hemiptera: Cicadellidae). Journal of.Economic Entomology. 2011; 104(2): 360–366. https://doi.org/10.1603/ec10174