Системные патологические нарушения у молоди радужной форели (Oncorhynchus mykiss) при заболевании ихтиофтириозом (Ichthyophthirius multifiliis)

В статье представлены результаты комплексного исследования системных патологических нарушений у молоди радужной форели (Oncorhynchus mykiss) при спонтанной инвазии Ichthyophthirius multifiliis. Интенсивность инвазии (ИИ) ихтиофтириозом составила 7,0 ± 3,4 экз / п. з. м. и 24 ± 8,9 экз / п. з. м. на поверхности тела и жабр соответственно. Из печени инвазированных рыб выделен комплекс грамнегативных бактерий: Enterobacter sp. (20%), Citrobacter freundii (60%), Acinetobacter calcoaceticus (20%), что свидетельствует о развитии вторичной бактериальной инфекции. Гематологические исследования выявили снижение количества эритроцитов (до 1,05 ± 0,06 х 106 кл/мкл) и повышение числа лейкоцитов (до 3,87 ± 0,51 х 104 кл/мкл), лейкопению и нейтрофилию (38,45 ± 0,97%). Биохимический анализ сыворотки крови показал существенное увеличение активности АСТ (750,9 ± 147,7 U/л), АЛТ (39,4 ± 6,7 U/л), щелочной фосфатазы (467,8 ± 72,6 U/л), ЛДГ (2557,3 ± 245,1 U/л), концентрации общего белка (43,83 ± 5,31 г/л), альбумина (24,12 ± 2,2 г/л) и глюкозы (3,11 ± 0,13 мкмоль/л), а также мочевины (3,23 ± 0,62 мкмоль/л). Гистологический анализ выявил повреждения жаберного эпителия, деградацию почечных телец, вакуолизацию и некроз гепатоцитов, а также гипотрофию ретикулярно-эндотелиальных клеток селезенки. Полученные данные свидетельствуют, что ихтиофтириоз является системным заболеванием, приводящим к полиорганным нарушениям у радужной форели, и протекает в форме ассоциативного протозойно-бактериального заболевания.

1. Matthews R.A. Ichthyophthirius multifiliis Fouquet and Ichthyophthiriosis in Freshwater Teleosts. Advances in Parasitology. 2005; 59: 159–241. https://doi.org/10.1016/S0065-308X(05)59003-1

2. Kim J.-H., Hayward C.J., Joh S.-J., Heo G.-J. Parasitic infections in live freshwater tropical fishes imported to Korea. Diseases of.Aquatic Organisms. 2002; 52(2): 169–173. https://doi.org/10.3354/dao052169

3. Жезмер В.Ю., Белякова Н.В., Заливака Л.В. Энтеробактерии в установках с замкнутым циклом водоснабжения. Филатов В.И. (ред.). Индустриальные методы рыбоводства в замкнутых системах. М.: ВНИИПРХ. 1988; 55: 84–88.

4. Li W.J., Lyu X.M., Nie P., Liu Y. Morphological, histopathological and molecular characterization of parasitic ciliate Ichthyophthirius multifiliis infecting an indigenous and endangered fish, Schizothorax macropogon (Cyprinidae: Schizothoracinae) in high plateau, Tibet, China. Aquaculture Reports. 2022; 25: 101192. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2022.101192

5. Azimzadeh K. Comparative Studies of Some Haematological and Serological Indices in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum., 1792) with Ichthyophthiriasis. Turkish Journal of.Fisheries and Aquatic Sciences. 2016; 16(3): 617–627. https://doi.org/10.4194/1303-2712-v16_3_14

6. Heinecke R.D., Buchmann K. Inflammatory response of rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792) larvae against Ichthyophthirius multifiliis. Fish & Shellfish Immunology. 2013; 34(2): 521–528. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2012.11.036

7. Бауер О.Н., Юнчис О.Н. Новый род паразитических ресничных из тропических рыб. Паразитология. 2001; 35(2): 142–144.

8. Bassleer G. The new illustrated guide to fish diseases in ornamental tropical and pond fish. Westmeerbeec. 2005; 232.

9. Bassleer G. The new illustrated guide to fish diseases. Stationstraat. 2001; 232.

10. Dickerson H.W., Findly R.C. Immunity to Ichthyophthirius infections in fish: A synopsis. Developmental & Comparative Immunology. 2014; 43(2): 290–299. https://doi.org/10.1016/j.dci.2013.06.004

11. Buchmann K. Immune response to Ichthyophthirius multifiliis and role of IgT. Parasite Immunology. 2020; 42(8): e12675. https://doi.org/10.1111/pim.12675

12. Пронина Г.И., Петрушин А.Б. Изменение физиологоиммунологических показателей молоди сома обыкновенного Silurus glanis при поражении ихтиофтириозом. Ветеринарная патология. 2016; (2): 70–75. https://elibrary.ru/yzarfd

13. Yunus M., Wijaya A. Histopathological Changes in Gills of Wild Snakehead Murrel, Channa striata (Bloch, 1793) Infected with Ichthyophthirius multifiliis Fouquet, 1876 from Surabaya River. Proceedings of.the 9th International Seminar on Tropical Animal Production (ISTAP 2021). Atlantis Press. 2022; 269–272. https://doi.org/10.2991/absr.k.220207.056

14. Dickerson H.W. Ichthyophthirius multifiliis. Woo P.T.K., Buchmann K. (eds.). Fish parasites: pathobiology and protection. CABI. 2012; 55–72. https://doi.org/10.1079/9781845938062.0055

15. Wang Q., Yu Y., Zhang X., Xu Z. Immune responses of fish to Ichthyophthirius multifiliis (Ich): A model for understanding immunity against protozoan parasites. Developmental & Comparative Immunology. 2019; 93: 93–102. https://doi.org/10.1016/j.dci.2019.01.002

16. Tumbol R.A., Powell M.D., Nowak B.F. Ionic Effects of Infection of Ichthyophthirius multifiliis in Goldfish. Journal of.Aquatic Animal Health. 2001; 13(1): 20–26. https://doi.org/10.1577/1548-8667(2001)013<0020:IEOIOI>2.0.CO;2

17. Bush A.O., Lafferty K.D., Lotz J.M., Shostak A.W. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited. The Journal of.Parasitology. 1997; 83(4): 575–583. https://doi.org/10.2307/3284227

18. Shoemaker C.A., Martins M.L., Xu D.-H., Klesius P.H. Effect of Ichthyophthirius multifiliis parasitism on the survival, hematology and bacterial load in channel catfish previously exposed to Edwardsiella ictaluri. Parasitology Research. 2012; 111(5): 2223–2228. https://doi.org/10.1007/s00436-012-2988-5

19. Юхименко Л.Н., Койдан Г.С., Бычкова Л.И., Гаврилин К.В. Этиологическая структура аэромонад и ее влияние на развитие эпизоотического процесса. Аквакультура начала XXI века: истоки, состояние, стратегия развития. Материалы Международной научно-практической конференции. М.: ВНИРО. 2002; 240–244.

20. Ma D.-Z. et al. The different pathology of Gymnocypris przewalskii przewalskii and Schizopygopsis pylzovi infected with Ichthyophthirius multifiliis. Acta Hydrobiologica Sinica. 2019; 43(5): 1081–1091 (на кит. яз.). https://doi.org/10.7541/2019.127

21. Ventura M.T., Paperna I. Histopathology of Ichthyophthirim multifiliis infections in fishes. Journal of.Fish Biology. 1985; 27(2): 185–203. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1985.tb04020.x

22. Peyghan R., Rezaie A., Hassani F., Abyavi T. Histopathological study of gill and fish treatment in Ichthyophthiriasis of white skirt tetra (Gymnocorymbus ternetzi). Iranian Veterinary Journal. 2021; 17(1): 106–110. https://doi.org/10.22055/IVJ.2020.237783.2279

23. Никифоров-Никишин Д.Л., Кочетков Н.И., Гаврилин К.В., Калита Т.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Гистопатологические изменения в разных органах при микобактериозе рыб на примере тест-объектов — гуппи (Poecilia reticulata) и японской медаки (Oryzias latipes). Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2024; 18(7): 489–503. https://doi.org/10.33920/sel-09-2407-05

24. Никифоров-Никишин Д.Л., Гаврилин К.В., Кочетков Н.И., Головачева Н.А. Разработка экспериментальной модели аэромоноза рыб с использованием тест-объекта Danio rerio. Вестник Керченского государственного морского технологического университета. 2024; (2): 42–51. https://elibrary.ru/khntut

25. Гаврилин К.В., Мамыкина Г.А. Опыт лечения суперинфекции меченосцев. Аквариум. 2009; (5): 36–38.

26. Abu-Elala N.M., Attia M.M., Abd-Elsalam R.M., Gamal A., Younis N.A. Peracetic acid treatment of Ichthyophthirius multifiliis (Ciliophora: Ichthyophthiriidae) and Trichodina spp. reduces the infection by Aeromonas hydrophila and improves survival in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 2021; 538: 736591. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736591

27. Blaxhall P.C., Daisley K.W. Routine haematological methods for use with fish blood. Journal of.Fish Biology. 1973; 5(6): 771–781. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1973.tb04510.x

28. von Gersdorff Jørgensen L. The fish parasite Ichthyophthirius multifiliis.— Host immunology, vaccines and novel treatments. Fish & Shellfish Immunology. 2017; 67: 586–595. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.06.044

29. Klein S., Feiden A., Boscolo W.R., Reidel A., Signor A., Signor A.A. Utilização de produtos químicos no controle de Ichthyophthirius multifiliis, Fouquet (1876) em alevinos de surubim do Iguaçu Steindachneridion sp., Garavello (1991). Semina: Ciências Agrárias. 2004; 25(1): 51–58.

30. von Gersdorff Jørgensen L. The dynamics of neutrophils in zebrafish (Danio rerio) during infection with the parasite Ichthyophthirius multifiliis. Fish & Shellfish Immunology. 2016; 55: 159–164. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.05.026

31. Xu D.-H., Shoemaker C.A., Klesius P.H. Ichthyophthirius multifiliis as a potential vector of Edwardsiella ictaluri in channel catfish. FEMS Microbiology Letters. 2012; 329(2): 160–167. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2012.02518.x

32. Tort L. Stress and immune modulation in fish. Developmental & Comparative Immunology. 2011; 35(12): 1366–1375. https://doi.org/10.1016/j.dci.2011.07.002

33. Микряков Д.В., Пронина Г.И., Суворова Т.А., Петрушин А.Б. Некоторые показатели гуморального и клеточного иммунитета молоди сома обыкновенного, переболевшего ихтиофтириозом. Труды ВНИРО. 2019; 175: 104–111. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2019-175-104-111

34. von Gersdorff Jørgensen L., Heinecke R.D., Skjødt K., Rasmussen K.J., Buchmann K. Experimental evidence for direct in situ binding of IgM and IgT to early trophonts of Ichthyophthirius multifiliis (Fouquet) in the gills of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of.Fish Diseases. 2011; 34(10): 749–755. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2011.01291.x

35. Mokhtar D.M., Zaccone G., Alesci A., Kuciel M., Hussein M.T., Sayed R.K. Main Components of Fish Immunity: An Overview of the Fish Immune System. Fishes. 2023; 8(2): 93. https://doi.org/10.3390/fishes8020093

36. Романова Н.Н., Мышкин А.В., Щелкунова Ю.П., Токарева С.Б., Сехина О.В., Кудинов П.В. Оценка эффективности применения комплекса антибактериальных препаратов для лечения бактериальной геморрагической септицемии у рыб. Труды ВНИРО. 2023; 194: 165–175. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2023-194-165-175

37. Nørregaard R.D. et al. Element concentrations, histology and serum biochemistry of arctic char (Salvelinus alpinus) and shorthorn sculpins (Myoxocephalus scorpius) in northwest Greenland. Environmental Research. 2022; 208: 112742. https://doi.org/10.1016/j.envres.2022.112742

38. Al-Otaibi A.M., Al-Balawi H.F.A., Ahmad Z., Suliman E.M. Toxicity bioassay and sub-lethal effects of diazinon on blood profile and histology of liver, gills and kidney of catfish, Clarias gariepinus. Brazilian Journal of.Biology. 2019; 79(2): 326–336. https://doi.org/10.1590/1519-6984.185408

39. Yancheva V., Velcheva I., Stoyanova S., Georgieva E. Histological biomarkers in fish as a tool in ecological risk assessment and monitoring programs: a review. Applied Ecology and Environmental Research. 2016; 14(1): 47–75. https://doi.org/10.15666/aeer/1401_047075