Комбинированный фунгицид для защиты масличных культур

Подсолнечник является стратегически важной культурой в обеспечении продовольственной безопасности. Для получения высоких урожаев необходимы своевременная диагностика заболеваний и правильный выбор высокоэффективных препаратов для ее защиты. Поражается подсолнечник такими фитопатогенами, как серая гниль (Botryotinia fuckeliana (de Bary) Whet. [Botrytis cinerea Pers.] (Botrci) и белая гниль (Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary (Sclesc). Серая гниль приводит к 60–80%-ной потере урожая, белая гниль — к снижению жира в семенах и горьковатому вкусу масла. Для исследований были подобраны нерегистрированный новый многокомпонентный фунгицид «Эльгафар, КЭ» (300 г/л пропиконазола + 200 г/л тебуконазола), регистрированный на подсолнечнике фунгицид «Амистар Голд, СК» (125 г/л азоксистробина + 125 г/л дифеноконазола). Исследования проводили на подсолнечнике сорта ВНИИМК 8883 улучшенный от ФНЦ ВНИИМК им. В.С. Пустовойта. В результате исследований установлено, что обработка в норме применения 0,6 л/га приводит к снижению развития серой гнили (Botrytis cinerea) до 4,5–4,9% и эффективности препарата 83,5%. Высокую эффективность испытываемый препарат показал и против белой гнили (Sclerotinia sclerotiorum) в нормах применения 0,4–0,6 л/га, соответствующую 82,9–84,2%. Полученные результаты подтверждают целесообразность опрыскивания фунгицидом «Эльгафар, КЭ» (300 г/л пропиконазола + 200 г/л тебуконазола) в испытываемых нормах применения с целью увеличения урожайности и качества семян подсолнечника.

1. Плужникова И.И., Криушин Н.В. Оценка эффективности использования фунгицидов на растениях подсолнечника в разные фазы его развития. Международный сельскохозяйственный журнал. 2021; 64(2): 61–64. https://doi.org/10.24412/2587-6740-2021-2-61-64

2. Есаулко А.Н., Котова А.С., Аль-Аттафи М.К.Р., Подколзин А.И., Голосной Е.В. Оптимизация минерального питания подсолнечника в условиях Центрального Предкавказья. Плодородие. 2022; (6): 12–14. https://doi.org/10.25680/S19948603.2022.129.03

3. Шаповалова Н.Н., Володин А.Б., Менькина Е.А., Ахмедшина Д.А. Влияние последействия длительного применения минеральных удобрений на урожайность и качество зерна сорго на черноземе обыкновенном Центрального Предкавказья. Зерновое хозяйство России. 2023; (2): 84–91. https://doi.org/10.31367/2079-8725-2023-85-2-84-91

4. Лукомец В.М., Пивень В.Т., Тишков Н.М. Интегрированная защита подсолнечника. Защита и карантин растений. 2011; (2): 50–56. https://elibrary.ru/ntmktb

5. Lee H.K., Tewari J.P., Turkington T.K. Symptomless infection of barley seed by Rhynchosporium secalis. Canadian Journal of Plant Pathology. 2001; 23(3): 315–317. https://doi.org/10.1080/07060660109506947

6. Izaguirre-Mayoral M.L., Carballo O., Alceste C., Romano M., Nass H.A. Physiological Performance of Asymptomatic and Yellow Leaf Syndrome-affected Sugarcanes in Venezuela. Journal of Phytopathology. 2002; 150(1): 13–19. https://doi.org/10.1046/j.1439-0434.2002.00709.x

7. Kintzios S. et al. The application of the bioelectric recognition assay for the detection of human and plant viruses: definition of operational parameters. Biosensors and Bioelectronics. 2001; 16(7–8): 467–480. https://doi.org/10.1016/S0956-5663(01)00161-0

8. Астарханова Т.С., Алибалаев Д.А., Алибалаева Л.И., Абасова Т.И. Эффективность современных фунгицидов в защите зерновых культур. Аграрная наука. 2024; (9): 101–106. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-386-9-101-106

9. Behzad A. et al. Effectiveness of Rhodococcus erythropolis strain OPI-01 on the fungal development in winter wheat. Biodiversitas. 2024; 25(3): 1063–1070. https://doi.org/10.13057/biodiv/d250320

10. Chane A. et al. Biocontrol of Soft Rot: Confocal Microscopy Highlights Virulent Pectobacterial Communication and Its Jamming by Rhodococcal Quorum-Quenching. Molecular Plant-Microbe Interactions. 2019; 32(7): 802–812. https://doi.org/10.1094/MPMI-11-18-0314-R

11. Иванова О.М., Ерофеев С.А., Ветрова С.В., Макаров М.Р. Эффективность удобрения под подсолнечник на черноземе, типичном Тамбовской области. Масличные культуры. 2021; (3): 29–34. https://doi.org/10.25230/2412-608X-2021-3-187-29-34

12. Долженко В.И., Кармазин А.П., Астарханова Т.С. Пестициды и их действие на человека и окружающую среду. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство. 2023; 18(4): 455–463. https://doi.org/10.22363/2312-797X-2023-18-4-455-463

13. Verdenelli R.A., Dominchin M.F., Pérez-Brandan C., Rovea A., Vargas-Gil S., Meriles J.M. Effect of long-term mineral fertilisation on soil microbial abundance, community structure and diversity in a Typic Hapludoll under intensive farming systems. Annals of Applied Physiology. 2019; 175(3): 363–375. https://doi.org/10.1111/aab.12546

14. Ивебор М.В., Пикалова Н.А., Фролов С.С., Фролова И.Н. Фитопатогенные микромицеты в семенах подсолнечника в условиях Краснодарского края. Инновационные исследования и разработки для научного обеспечения производства и хранения экологически безопасной сельскохозяйственной и пищевой продукции. Сборник материалов III Международной научно-практической конференции. Краснодар: Всероссийский научно-исследовательский институт табака, махорки и табачных изделий. 2019; 1: 417–422. https://elibrary.ru/sueyhn

15. Подварко А.Т., Есипенко Л.П., Кустадинчев А.Д. Эффективность биорациональных средств защиты посевов подсолнечника от болезней в условиях Краснодарского края. Земледелие. 2021; (6): 41–44. https://doi.org/10.24412/0044-3913-2021-6-41-44

16. Гаршин М.В. Оценка эффективности фунгицидов при химической защите подсолнечника. Синергия наук. 2017; 14: 906–910. https://elibrary.ru/zdrimj