Полиорганная недостаточность у бурого медведя (Ursus arctos) в условиях неволи. Описание клинического случая

Бурые медведи содержатся в различных условиях неволи, которые могут сильно ухудшать их состояние. Гиперадренокортицизм, вызванный гормональным нарушением в результате длительного содержания в неволе и стресс-факторами и приведший к полиорганной недостаточности, ранее не наблюдался и не был описан у медведей. Повышенная секреция кортизола приводит не только к поражению внутренних органов, но и к сахарному диабету, снижению иммунной резистентности и, как следствие, к потере способности иммунной системы распознавать и уничтожать патогенные микроорганизмы. В литературных источниках встречаются сообщения о гибели животных, живущих в неволе, в результате бактериальных инфекций (например, генерализованный клостридиоз у гималайского медведя, легочной нокардиоз тихоокеанской афалины, грибковое поражение легких у северного оленя). Однако ни в одной из данных работ не проводили детального патологоанатомического и гистологического исследования всех органов. Представленный авторами клинический случай полиорганной недостаточности у бурого медведя в условиях зоопарка объединяет данные анамнеза, симптоматику, результаты лабораторных и инструментальных показателей при жизни животного, а также результаты патоморфологического, гистологического и гистохимического исследований. Эти данные позволяют рекомендовать зоопаркам минимизировать стресс-факторы у животных при их содержании, при необходимости прибегать к медикаментозной коррекции стресса, а также проводить ежеквартальную диспансеризацию для раннего выявления болезни и проведения своевременной и целенаправленной терапии. 

1. Robbins C.T. et al. Ursids evolved early and continuously to be lowprotein macronutrient omnivores. Scientific Reports. 2022; 12: 15251. https://doi.org/10.1038/s41598-022-19742-z

2. Arnhold W., Schrauzer G.N., Heuschele W.P. Possible dietary influence on hepatobiliary cancer in sloth bears (Melursus ursinus). Proceedings of the first annual Conference of the Nutrition Advisory Group (NAG) of the American Zoo & Aquarium Association (AZA). 1995.

3. Rode K.D., Robbins C.T., Stricker C.A., Taras B.D., Tollefson T.N. Energetic and health effects of protein overconsumption constrain dietary adaptation in an apex predator. Scientific Reports. 2021; 11: 15309. https://doi.org/10.1038/s41598-021-94917-8

4. Maślak R., Sergiel A., Bowles D., Paśko Ł. The Welfare of Bears in Zoos: A Case Study of Poland. Journal of Applied Animal Welfare Science. 2016; 19(1): 24–36. https://doi.org/10.1080/10888705.2015.1071671

5. Collins D.M. Ursidaey. Miller R.E., Fowler M.E. (eds.). Fowler’s Zoo and Wild Animal Medicine. St. Louis, Missouri: Elsevier; Saunders. 2015; 8: 498–508. https://doi.org/10.1016/B978-1-4557-7397-8.00050-5

6. Stagni E., Sequeira S., Brscic M., Redtenbacher I., Hartmann S. A retrospective study on the prevalence of main clinical findings in brown bears (Ursus arctos) rescued from substandard husbandry conditions. Frontiers in Veterinary Science. 2023; 10: 1299029. https://doi.org/10.3389/fvets.2023.1299029

7. Сивкова Т.Н., Волков С.В., Бессонова Е.М., Шкарина В.М. Случаи острого клостридиоза у гималайского медведя в неволе. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2022; 250: 214‒220. https://doi.org/10.31588/2413_4201_1883_2_250_214

8. Balseiro A. et al. New threats in the recovery of large carnivores inhabiting human-modified landscapes: the case of the Cantabrian brown bear (Ursus arctos). Veterinary Research. 2024; 55: 24. https://doi.org/10.1186/s13567-024-01279-w

9. Barnes D.M., Rogers L.L. Clostridial myonecrosis in a black bear associated with drug administration. Journal of Wildlife Diseases. 1980; 16(3): 315–317. https://doi.org/10.7589/0090-3558-16.3.315

10. Balseiro A. et al. Clostridium sordellii in a Brown Bear (Ursus arctos) from Spain. Journal of Wildlife Diseases. 2013; 49(4): 1047–1051. https://doi.org/10.7589/2013-03-065

11. Galateanu G., Göritz F., Saragusty J., Szentiks C.A., Wibbelt G., Hildebrandt T.B. Bear watching for foot and spine osteopathology correlation in captive bears (Ursidae). Proceedings of the International Conference on Diseases of Zoo and Wild Animals. 2014; 122‒125.

12. Græsli A.R., Fahlman Å., Evans A.L., Bertelsen M.F., Arnemo J.M., Nielsen S.S. Haematological and biochemical reference intervals for free-ranging brown bears (Ursus arctos) in Sweden. BMC Veterinary Research. 2014; 10: 183. https://doi.org/10.1186/s12917-014-0183-x

13. Seo M.-G., Eo K.-Y., Kwak D., Kim K.-T. Bacterial Sepsis Associated with a Captive State Caused by Edwardsiella tarda in a Eurasian Brown Bear (Ursus arctos arctos). Journal of Veterinary Clinics. 2023; 40(1): 78–82. https://doi.org/10.17555/jvc.2023.40.1.78

14. Babic N.L., Johnstone C.P., Reljić S., Sergiel A., Huber Đ., Reina R.D. Evaluation of physiological stress in free‐ranging bears: current knowledge and future directions. Biological Reviews. 2023; 98(1): 168–190. https://doi.org/10.1111/brv.12902

15. Föllmi J. et al. A scoring system to evaluate physical condition and quality of life in geriatric zoo mammals. Animal Welfare. 2007; 16(3): 309–318. https://doi.org/10.1017/S0962728600027123

16. Bando M.K.H. et al. Metabolic derangements and reduced survival of bile-extracted Asiatic black bears (Ursus thibetanus). BMC Veterinary Research. 2019; 15: 263. https://doi.org/10.1186/s12917-019-2006-6

17. Lawrence Y.A., Steiner J.M. Laboratory Evaluation of the Liver. Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice. 2017; 47(3): 539‒553. https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2016.11.005

18. Bourne D.C., Cracknell J.M., Bacon H.J. Veterinary issues related to bears (Ursidae). International Zoo Yearbook. 2010; 44: 16‒32. https://doi.org/10.1111/j.1748-1090.2009.00097.x

19. Pearson A.M., Halloran D.W. Hematology of the brown bear (Ursus arctos) from southwestern Yokon Territory, Canada. Canadian Journal of Zoology. 1972; 50(3): 279‒286. https://doi.org/10.1139/z72-038