Динамика гематологических, биохимических, иммунологических изменений при болезнях органов пищеварения перепелов

 Актуальность. При доместикации в неестественной среде обитания ограниченное территориальное пространство, нетрадиционное кормление являются основными причинами снижения естественной резистентности организма птицы. На перепелиных фермах при технологии содержания птицы, существенно отличающейся от природных условий, наблюдается развитие комплекса поражений системы органов, с преобладанием поражений системы органов пищеварения.

Целью работы являлось изучение клинико-морфологических показателей при болезнях органов пищеварения перепелов.

Методы. Объектом исследования являлись птица отряда перепелов породы «Coturnix coturnix japonica» 30-суточного постинкубационного онтогенеза. Клинический осмотр  птицы проводили по общепринятой схеме. Убой и  обескровливание птицы проводили, соблюдая  международные принципы Хельсинской декларации «О  гуманном отношении к животным». Для определения  гематологических и биохимических показателей птиц по принципу аналогов разделили на группы: контроль — клинически здоровые птицы (n = 15); опыт — клинические  проявления болезни птицы (n = 15). При  патологоанатомическом исследовании органы препарировали с последующим извлечением из полости и  проводили визуальную оценку цвета и консистенции, определяли абсолютную массу (г), линейные промеры (см). Экспериментальные данные подвергали статистической обработке общепринятым методом с использованием программы Statistika для PC Microsoft Excel 2007.

Результаты. При патологоанатомическом исследовании наиболее часто признаки локализовались в тканях и органах пищеварительной системы. Наличие синдрома желудочно-кишечных болезней характеризовалось повышением общего числа лейкоцитов, эозинофилов, псевдоэозинофилов; лимфоцитов, моноцитов, снижением общего белка, глюкозы, повышением мочевины, щелочной фосфатазы. Установлено снижение лизоцимной и бактерицидной активности сыворотки крови, а также снижение фагоцитарной активности лейкоцитов. 

1. Бессарабов, Б.Ф. Болезни певчих и декоративных птиц. – Москва: Россельхозиздат, 1980 – с.192

2. Ежков В.О. Клинико-морфологические особенности нарушения метаболизма у сельскохозяйственных и экзотических птиц и коррекция его кормовыми добавками у кур: дис. … канд. вет. наук / В.О. Ежков // Казань – 2008. – 270 с.

3. Клетикова Л.В. Влияние пробиотических препаратов «лактур» и «бифитрилак» на яичную продуктивность и обмен веществ у кур: дис. … канд. биол. наук / Л.В. Клетикова // Саранск, – 2012. – 318 с.

4. Кочиш И.И. Птицеводство / И.И. Кочиш, М.Г. Петраш, С.Б. Смирнов. – М.: – КолосС – 2003. – 77 с.

5. Кожемяка, Н.В. Профилактика и лечение основных незаразных болезней алиментарного происхождения / Н.В. Кожемяка // Эффективное животноводство. – 2016. – № 2 (123). – С. 12-16.

6. Ленченко, Е.М. Гистохимическая характеристика органов иммунитета птиц при эшерихиозе / Е.М. Ленченко, Е.М. Плотникова // Ветеринария. – 2014. – № 8. – С. 25 – 28.

7. Ленченко, Е.М. Морфология органов пищеварения и микрофлора кишечника цыплят при заражении Escherichia coli / Е.М. Ленченко, Н.Н. Ванина // Сельскохозяйственная биология. – 2005. – № 4. – С. 69-74

8. Матюшев В.В. Использование белково- витаминного коагулята в производстве экструдированных комбикормов для цыплят-бройлеров / В.В. Матюшев, И.А. Чаплыгина, А.В. Семенов // Вестник КрасГАУ. – 2020. – № 9. – С. 171– 176. DOI: 10.36718/1819-4036-2020-9-171-176

9. Сухинин, А.А. Метод коли-клиренса (сообщение 2). Измерение степени иммуносупрессии организма / Сухинин А.А., Виноходова М.В. // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2014. - № 3. – С. 219-224.

10. Хельсинская декларация о гуманном отношении к животным Международной Медицинской Ассоциации. Принята 18-ой Генеральной ассамблеей ВМА, Хельсинки, Финляндия, июнь 1964, пересмотрена: 52-ой Генеральной ассамблеей ВМА, Эдинбург, Шотландия, октябрь 2000.

11. Abd El-Hack M.E. Influence of dietary inclusion of untreated or heat-treated Jatropha meal on productive and reproductive performances and biochemical blood parameters of laying Japanese quail / M.E. Abd El-Hack, M. Alagawany, S.A.A. El-Sayed, J. Fowler // Poultry Science. – 2017. – Vol. 96. – P. 2761-2767.

12. Elnesr S.S. Effect of dietary sodium butyrate supplementation on growth, blood biochemistry, haematology and histomorphometry of intestine and immune organs of Japanese quail / S.S. Elnesr, A. Ropy, A.H. Abdel-Razik // Animal. – 2019. – Vol. 13(6). – P. 1234-1244.

13. Gromysz-Kaekowska K. Haematological changes in male and female pharaoh quails (coturnix coturnix pharaoh) after ekatin intoxication / K. Gromysz-Kaekowska, E. Szubartowska // Camp. Eiochem. Physiol. – 1986. – Vol. 85(1). – P. 41-48.

14. Casagrande R.A. Fowl typhoid (Salmonella Gallinarum) outbreak in Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) / R.A. Casagrande, A.T.B. Wouters, F. Wouters, C. Pissetti, M.R.I. Cardoso, D. Driemeier // Avian Dis. – 2014. – Vol. 58(3). – P. 491-494. DOI: 10.1637/10796-021114-Case.1.

15. Garcia-Mazcorro J.F. Comprehensive molecular characterization of bacterial communities in feces of pet birds using 16s marker sequencing / Garcia-Mazcorro JF, et al. // Microb Ecol. – 2017. – Р. 224-227.

16. Lan P.T. Impact of two probiotic Lactobacillus strains feeding on fecal lactobacilli and weight gains in chicken // P.T. Lan, T.L. Binh, Y. Benno // The Journal of General and Applied Microbiology. – 2003. – Vol. 49 (1). – P. 29-36. https://doi.org/10.2323/jgam.49.29