Показатели антиоксидантной защиты организма молочных коров в зависимости от фазы лактации и физиологического состояния

Актуальность. Научный интерес представляют исследования по оценке про- и антиоксидантного статуса организма продуктивных животных, поскольку они взаимосвязаны со здоровьем, состоянием иммунной и репродуктивной системы.

Методы. С целью изучения показателей антиоксидантной защиты в организме молочных коров в зависимости от месяца лактации и физиологического состояния, в условиях ПЗ «Ладожский» (Краснодарский край) в зимний период 2021 года были сформированы следующие группы коров: сухостойные; лактирующие: 1-го месяца; 2-го месяца; 3-го месяца; 4-го месяца; 5-го месяца; 6–7-го месяца. В крови исследуемых животных определены следующие показатели: концентрация церулоплазмина, продуктов, реагирующих с тиобарбитуровой кислотой, суммарное содержание водорастворимых антиоксидантов, общий антиоксидантный статус, антиокислительная активность сыворотки крови.

Результаты. Полученные результаты указывают на изменения антиоксидантного статуса в организме коров в зависимости от физиологического состояния и месяца лактации. К 5–6-му месяцам лактации в крови коров наблюдаются максимальные уровни накопления продуктов ПОЛ и снижается уровень церулоплазмина, а поддержание общего антиоксидантного статуса осуществляется за счет других водорастворимых антиоксидантов. Наиболее значимые изменения в изучаемых показателях наблюдаются между сухостойными и лактирующими коровами. Полученные результаты позволят проводить мониторинг состояния здоровья животных и послужат накоплению базы данных для разработки референтных значений показателей антиоксидантного статуса в организме молочных коров в зависимости от физиологического состояния и фазы лактации.

1. Santos AL, Sinha S, Lindner AB The good, the bad, and the ugly of ROS: New Insights on Aging and Aging-Related Diseases from Eukaryotic and Prokaryotic Model Organisms. Oxid. Med. Cell. Longev, 2018; 1941285. doi:10.1155/2018/1941285.

2. Ошуркова Ю.Л., Глаголева Т.И. Биологические аспекты интенсификации животноводства. Российская сельскохозяйственная наука. 2017; 5:51–53

3. Соловьева Л.П., Калыш Т.В., Замуравкин В.И. Восстановление функциональной активности гемостаза у телят и поросят молочно-растительного питания, перенесших неблагоприятное средовое воздействие. Научное обозрение. Биологические науки. 2019; 1: 56–61.

4. Abuelo A, Hernández J, Benedito JL, Castillo C. The importance of the oxidative status of dairy cattle in the periparturient period: Revisiting antioxidant supplementation. Anim. Physiol. An. 2015; 99: 1003–1016. doi:10.1111/jpn.12273.

5. Mandelker L. Oxidative stress: the role of mitocondri, free radicals, and antioxidants. In:1st ed. Veterinary Clinics of North America, Smal Animal Practise; 2008. doi: 10.1016/j. cvsm.2007.11.009.

6. Li H, Zhang Y, Li R, Wu Y, Zhang D, Xu H, Zhang Y., Qi Z. Effect of seasonal thermal stress on oxidative status, immune response and stress hormones of lactating dairy cows. Animal Nutrition. 2021; 7(1): 216–223. doi:10.1016/j.aninu.2020.07.006.

7. Lin S, Liu J, Wang K, Wang DM. Effects of stocking density on oxidative stress status and mammary gland permeability in early lactating dairy cows. Animal Science Journal. 2019; 90(7): 894– 902. doi:10.1111/asj.13206.

8. Cadenas E, Davies K. J. A. Mitochondrial free radical generation,oxidative stress, and aging. Free Radical Biology and Medicine. 2000; 29: 222–230. doi: 10.1016/s0891– 5849(00)00317–8.

9. Zhao W., Chen X., Xiao J, Chen XH, Zhang XF, Wang T, Zhen YG, Qin GX. Prepartum body condition score affects milk yield, lipid metabolism, and oxidation status of Holstein cows. AsianAustralasian Journal of Animal Sciences. 2019; 12: 1889–1896. doi:10.5713/ajas.18.0817.

10. Alahmar AT. Role of oxidative stress in male infertility: An updated review. Journal of Human Reproductive Sciences. 2019; 12: 4– 18. doi:10.4103/jhrs.JHRS_150_18.

11. Bhardwaj JK, Panchal H, Saraf P. Ameliorating Effects of Natural Antioxidant Compounds on Female Infertility: a Review. Reproductive Sciences. 2020; 28(5):1227–1256. doi:10.1007/s43032–020-00312–5.

12. Rizzo A, Roscino MT., Binetti F, Sciorsci RL. Roles of reactive oxygen species in female reproduction. Reprod. Domest. Anim. 2012; 47: 344–352. doi:10.1111/j.1439–0531.2011.01891.x.

13. Talukder S., Kerrisk K.L., Gabai G., Celi P. Role of oxidantantioxidant balance in reproduction of domestic animals. Anim. Prod. Sci. 2017; 57: 1588–1597. doi:10.1071/AN15619.

14. Turk R, Podpečan O, Mrkun J, Flegar-Meštrić Z, Perkov S, Zrimšek P. The effect of seasonal thermal stress on lipid mobilisation, antioxidant status and reproductive performance in dairy cows. Reproduction in Domestic Animals. 2015; 50(4): 595– 603. doi:10.1111/rda.12534.

15. Галочкин В.А., Кузнецова Т.С. Антиоксидантный статус организма свиноматок и их потомства при использовании минеральных и органических форм селена. Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2000; 2: 51

16. McCarthy CG, Saha P, Golonka RM, Wenceslau CF, Joe B, Kumar MV Innate Immune Cells and Hypertension: Neutrophils and Neutrophil Extracellular Traps (NETs). Comprehensive Physiology. 2021; 11(1): 1575–1589. doi:10.1002/cphy.c200020.

17. Batistel F, Arroyo JM, Garces CIM, Bellingeri A, Trevisi E, Parys C, Saremi B, Loor J. Enhancing methionine supply alleviates inflammation and oxidative stress and improves liver function during the peripartum period in dairy cows. Special Issue: Experimental Biology 2017 Meeting Abstracts. 2018; 31(1): 964.13–964.13. doi:10.1096/fasebj.31.1_supplement.964.13

18. Фомичев Ю.П., Ермаков И.Ю. Применение в питании молочных коров энерго-антиоксидантного комплекса и его влияние на продуктивность и качество молока. Молочное и мясное скотоводство. 2021; 2: 30–33

19. Какишев М.Г., Кушалиев К.Ж., Радойичич Б. Состояние перекисного окисления липидов у овец, вызванных B. ovis. Молодой ученый. 2015; 8.3 (88.3): 27–30. URL: https://moluch.ru/archive/88/17977/

20. Correlation of oxidative stress‐related indicators with milk composition and metabolites in early lactating dairy cows / Zheng S., Qin G., Zhen Y., Zhang X, Chen X, Dong J, Li C, Aschalew ND, Wang T, Sun Z. Veterinary Medicine and Science. 2021; 7(6): 2250–2259. doi:10.1002/vms3.615.

21. Fries C.A., Villamaria C.Y., Spencer J.R., Rasmussen TE, Davis MR. C1 esterase inhibitor ameliorates ischemia reperfusion injury in a swine musculocutaneous flap model. Microsurg. 2017; 37 (2): 142–147. doi: 10.1002/micr.30053.

22. Герасимов А.М., Деленян Н.В., Шаов М.Т. Формирование системы противокислородной защиты организма. М. -1998. -187 с