Использование проб молока при эпизоотическом контроле болезней крупного рогатого скота

Актуальность. Приведен анализ возможности использования молока в качестве неинвазивного типа проб при эпизоотологическом контроле заболеваний крупного рогатого скота. В процессе патогенеза многие возбудители вызывают поражения молочной железы или выделяются вместе с молоком, что делает молоко идеальной пробой для лабораторной диагностики инфекционных болезней крупного рогатого скота, поскольку оно доступно в любом количестве и его пробы легко собрать.

Методы. Использованы общепринятые методы анализа документов.

Результаты. Показано, что пробы молока возможно использовать как на индивидуальном, так и на популяционном уровне для ранней идентификации инфицированных стад, проводить скрининг инфицированных стад и использовать для получения доказательств благополучия стад. Доступность коммерческих диагностических тест-систем для выявления антител в молоке к возбудителям лейкоза КРС, вирусной диареи КРС, Brucella abortus, Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis, Fasciola hepatica, Ку-лихорадки (Coxiella burnetii) делает доступными программы контроля и искоренения болезней в дойных стадах и на уровне целых стран. Использование объединенных неинвазивных проб молока позволяет вести борьбу с медленно прогрессирующими и хроническими инфекциями дойного скота (лейкоз КРС, паратуберкулез КРС, бруцеллез) и в режиме реального времени исключать животных-носителей из производственной цепочки, что свидетельствует о целесообразности внедрения данного вида проб в ветеринарную практику в Российской Федерации.

1. Чугаева Н.А., Мищенко А.В., Кондаков С.Э., Белецкий С.О., Гордеев В.В., Дроздова Е.И. Перспективы использования технологии ДБС (сухие пятна крови) в ветеринарии. Аграрный вестник Приморья. 2022; 25(1): 84–90. https://elibrary.ru/epltmq

2. Думова В.В. и др. Противовирусные антитела в молозиве и молоке коров. Российский ветеринарный журнал. 2008; 49: 40–42. 2. Dumova V.V. et al. Antiviral antibodies in colostrum and milk of cows. Russian Veterinary Journal. 2008; 49: 40–42 (In Russian).

3. Presi P., Struchen R., Knight-Jones Th., Scholl S., Heim D. Bovine viral diarrhea (BVD) eradication in Switzerland–Experiences of the first two years. Preventive Veterinary Medicine. 2011; 99(2–4): 112–121. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2011.01.012

4. Reichel M.P., Tham K.M., Barnes S., Kittelberger R. Evaluation of alternative methods for the detection of bovine leukaemia virus in cattle. New Zealand Veterinary Journal. 1998; 46(4): 140–146. https://doi.org/10.1080/00480169.1998.36078

5. Gulyukin A.M., Belimenko V.V., Shabeykin A.A., Droshnev A.E., Laishevtsev A.I. Epizootogical geo-information systems. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2020; 421(4): 042013. https://doi.org/10.1088/1755-1315/421/4/042013

6. Мищенко В.А. и др. Использование колостральных антител при иммуномониторинге вирусных инфекций крупного рогатого скота. Актуальные проблемы инфекционной патологии животных. Владимир: ВНИИЗЖ. 2003: 77–82.

7. Fleischhauer G. The ring test in Brucella and Salmonella infections. Deutsche Medizinische Wochenschrift. 1955; 80(11): 390, 391.

8. Kittelberger R., Reichel M.P., Joyce M.A., Staak C. Serological crossreactivity between Brucella abortus and Yersinia enterocolitica 0:9. III. Specificity of the in vitro antigen-specific gamma interferon test for bovine brucellosis diagnosis in experimentally Yersinia enterocolitica 0:9-infected cattle. Veterinary Microbiology. 1997; 57(4): 361–371. https://doi.org/10.1016/S0378-1135(97)00110-7

9. Nielsen K., Gall D. Fluorescence polarization assay for the diagnosis of brucellosis: A review. Journal of Immunoassay and Immunochemistry. 2001; 22(3): 183–201. https://doi.org/10.1081/IAS-100104705

10. Kim S.G., Kim E.H., Lafferty C.J., Dubovi E. Coxiella burnetii in Bulk Tank Milk Samples, United States. Emerging Infectious Diseases. 2005; 11(4): 619–621. https://doi.org/10.3201/eid1104.041036

11. Enzootic bovine leukosis (version adopted in May 2018). OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (mammals, birds and bees). 6th ed. Paris: Office International des Epizooties. 2018; 2: 1113–1124.

12. Reber A., Reist M., Schwermer H. Cost-effectiveness of bulk-tank milk testing for surveys to demonstrate freedom from infectious bovine rhinotracheitis and bovine enzootic leucosis in Switzerland. Schweizer Archiv für Tierheilkunde. 2012; 154(5): 189–197. https://doi.org/10.1024/0036-7281/a000329

13. Киселев М.Ю., Думова В.В., Мищенко А.В., Мищенко В.А., Нестеров А.А. Оптимизация способов определения противовирусных антител в молозиве и молоке коров. Ветеринария и кормление. 2011; (6): 23, 24. https://elibrary.ru/rdonjx

14. Schares G. et al. Adaptation of a commercial ELISA for the detection of antibodies against Neospora caninum in bovine milk. Veterinary Parasitology. 2004; 120(1–2): 55–63. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2003.11.016

15. Reichel M.P., Vanhoff K., Baxter B. Performance characteristics of an enzymelinked immunosorbent assay performed in milk for the detection of liver fluke (Fasciola hepatica) infection in cattle. Veterinary Parasitology. 2005; 129(1–2): 61–66. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2004.12.013

16. Collins M.T., Wells S.J., Petrini K.R., Collins J.E., Schultz R.D., Whitlock R.H. Evaluation of Five Antibody Detection Tests for Diagnosis of Bovine Paratuberculosis. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 2005; 12(6): 685–692. https://doi.org/10.1128/CDLI.12.6.685-692.2005

17. Charlier J., Claerebout E., De Mûelenaere E., Vercruysse J. Associations between dairy herd management factors and bulk tank milk antibody levels against Ostertagia ostertagi. Veterinary Parasitology. 2005; 133(1): 91–100. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.05.030

18. Forbes A.B., Vercruysse J., Charlier J. A survey of the exposure to Ostertagia ostertagi in dairy cow herds in Europe through the measurement of antibodies in milk samples from the bulk tank. Veterinary Parasitology. 2008; 157(1–2): 100–107. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.06.023

19. Klaasen M., Roest H.-J., van der Hoek W., Goossens B., Secka A., Stegeman A. Coxiella burnetii Seroprevalence in Small Ruminants in The Gambia. PLoS ONE. 2014; 9(1): e85424. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085424

20. Hamidi A. et al. Isolation and Identification of Brucella melitensis Biovar 3 from Vaccinated Small Ruminants: A Public Health Threat in Kosovo. Transboundary and Emerging Diseases. 2016; 63(6): e296–e299. https://doi.org/10.1111/tbed.12336

21. Poumarat F. et al. Comparative assessment of two commonly used commercial ELISA tests for the serological diagnosis of contagious agalactia of small ruminants caused by Mycoplasma agalactiae. BMC Veterinary Research. 2012; 8: 109. https://doi.org/10.1186/1746-6148-8-109

22. Nagel-Alne G.E., Valle P.S., Krontveit R., Sølverød L.S. Caprine arthritis encephalitis and caseous lymphadenitis in goats: Use of bulk tank milk ELISAs for herd-level surveillance. Veterinary Record. 2015; 176(7): 173. https://doi.org/10.1136/vr.102605

23. Nielsen S.S., Toft N., Okura H. Dynamics of Specific anti-Mycobacterium avium Subsp. paratuberculosis Antibody Response through Age. PLoS ONE. 2013; 8(4): e63009. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0063009

24. Bovine viral diarrhea (version adopted in May 2015). OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (mammals, birds and bees). 6th ed. Paris: Office International des Epizooties. 2018; 2: 1075–1096.

25. Infectious bovine rhinotracheitis/infectious pustular vulvovaginitis (version adopted in May 2017). OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (mammals, birds and bees). 6th ed. Paris: Office International des Epizooties. 2018; 2: 1139–1175.

26. Донник И.М., Гулюкин М.И., Бусол В.А., Коваленко Л.В., Коваленко А.М. Лейкоз крупного рогатого скота — диагностика, оздоровление, антропозоонозный потенциал (история вопроса) (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2021; 56(2): 230–244. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2021.2.230rus

27. Hill F.I., Reichel M.P., Tisdall D.J. Use of molecular and milk production information for the cost-effective diagnosis of bovine viral diarrhoea infection in New Zealand dairy cattle. Veterinary Microbiology. 2010; 142(1–2): 87–89. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.09.047

28. Renshaw R.W., Ray R., Dubovi E.J. Comparison of Virus Isolation and Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction Assay for Detection of Bovine Viral Diarrhea Virus in Bulk Milk Tank Samples. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2000; 12(2): 184–186. https://doi.org/10.1177/104063870001200219

29. Daly J.M., King B., Tarlinton R.A., Gough K.C., Maddison B.C., Blowey R. Comparison of Schmallenberg virus antibody levels detected in milk and serum from individual cows. BMC Veterinary Research. 2011; 11: 56. https://doi.org/10.1186/s12917-015-0365-1

30. Elvander M., Edwards S., Näslund K., Linde N. Evaluation and Application of an Indirect ELISA for the Detection of Antibodies to Bovine Respiratory Syncytial Virus in Milk, Bulk Milk, and Serum. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 1995; 7(2): 177–182. https://doi.org/10.1177/104063879500700202