Использование MONTANIDE ISA 78 VG в качестве адъюванта при изготовлении противобактериальных вакцин для кур

Актуальность. Применение антимикробных препаратов и вакцинопрофилактика являются основными способами предупреждения и борьбы с большинством болезней бактериальной этиологии. В то же время бесконтрольное использование противомикробных средств без определения чувствительности микроорганизмов, как правило, не дает возможности получить положительный терапевтический результат. При этом грамотно составленная схема применения инактивированных вакцин с учетом эпизоотической ситуации является эффективным и безопасным инструментом контроля бактериальных болезней. В связи с этим представленные в данной статье результаты испытания образцов вакцин против бактериальных болезней птиц, изготовленных на основе модернизированного масляного адъюванта Montanide ISA 78 VG, являются актуальными.

Методы. Для проведения исследований на основе масляного адъюванта Montanide ISA 78 VG были изготовлены четыре образца вакцин. Первый образец вакцины — против сальмонеллеза птиц, второй — против пастереллеза птиц, третий — против респираторного микоплазмоза птиц, четвертый — против гемофилеза птиц. Все изготовленные образцы вакцин были исследованы согласно общепринятым методам по показателям: стерильность, стабильность и вязкость эмульсии. Для определения реактогенности и антигенной активности образцов вакцин использовали молодняк кур яичного направления в возрасте 25–40 сут.

Результаты. Анализ полученных результатов физических и биологических свойств испытанных инактивированных вакцин против бактериальных болезней птиц позволяет сделать заключение, что вакцина против респираторного микоплазмоза птиц, изготовленная на основе адъюванта Montanide ISA 78 VG, является безопасным и эффективным иммунобиологическим препаратом. Изготовление инактивированных вакцин против сальмонеллеза, пастереллеза и гемофилеза птиц на основе адъюванта Montanide ISA 78 R VG возможно только после внесения ряда изменений в технологию изготовленная данных препараторов, направленных на снижение их реактогенных свойств.

1. Рождественская Т.Н., Рузина А.В., Панкратов С.В., Яковлев С.С. Система обеспечения эпизоотического благополучия птицеводческих хозяйств в отношение бактериальных болезней птиц. Современные научные разработки и передовые технологии для промышленного птицеводства. Сборник статей научно-практической конференции. СПб.: Медиапапир. 2023; 76–89. https://www.elibrary.ru/devbfj

2. Tariq S. et al. Salmonella in Poultry; An Overview. International Journal of Multidisciplinary Sciences and Arts. 2022; 1(1): 80–84. https://doi.org/10.47709/ijmdsa.v1i1.1706

3. Tan S.J., Nordin S., Esah E.M., Mahror N. Salmonella spp. in Chicken: Prevalence, Antimicrobial Resistance, and Detection Methods. Microbiology Research. 2022; 13(4): 691–705. https://doi.org/10.3390/microbiolres13040050

4. Crispo M. et al. Otitis and meningoencephalitis associated with infectious coryza (Avibacterium paragallinarum) in commercial broiler vchickens. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2018; 30(5): 784–788. https://doi.org/10.1177/1040638718792964

5. Рузина А.В., Панкратов С.В. Усовершенствование средств специфической профилактики сальмонеллеза птиц. Ветеринария и кормление. 2022; 6: 72–74. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2022-6-19

6. Wibisono F.M. et al. A Review of Salmonellosis on Poultry Farms: Public Health Importance. Systematic Reviews in Pharmacy. 2020; 11(9): 481–486. https://doi.org/10.31838/srp.2020.9.69

7. Cabrera J.M. et al. Salmonella enterica serovars in absence of ttrA and pduA genes enhance the cell immune response during chick infections. Scientific Reports. 2023; 13: 595. https://doi.org/10.1038/s41598-023-27741-x

8. Панкратов С.В., Абгарян С.Р. Современные подходы в диагностике пастереллеза птиц. Нормативно-правовое регулирование в ветеринарии. 2022; 4: 68–71. https://doi.org/10.52419/issn2782-6252.2022.4.68

9. Gautier-Bouchardon A.V., Reinhardt A.K., Kobisch M., Kempf I. In vitro development of resistance to enrofloxacin, erythromycin, tylosin, tiamulin and oxytetracycline in Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma iowae and Mycoplasma synoviae. Veterinary Microbiology. 2002; 88(1): 47–58. https://doi.org/10.1016/s0378-1135(02)00087-1

10. Saha O., Islam M.R., Rahman M.S., Hoque M.N., Hossain M.A., Sultana M. First report from Bangladesh on genetic diversity of multidrug-resistant Pasteurella multocida type B:2 in fowl cholera. Veterinary World. 2021; 14(9): 2527–2542. https://doi.org/10.14202/vetworld.2021.2527-2542

11. Fauziah I., Asmara W., Wahyuni A.E.T.H. Antimicrobial sensitivity of Avibacterium paragallinarum isolates from layers in the special region of Yogyakarta, Indonesia. Veterinary World. 2021; 14(5): 1124–1127. https://doi.org/10.14202/vetworld.2021.1124-1127

12. Семина А.Н., Абгарян С.Р. Идентификации Salmonella enteritidis и Salmonella typhimurium методом полимеразно цепной реакции. Международный вестник ветеринарии. 2018; 4: 39–43. https://www.elibrary.ru/ypxlyt

13. Smallman T.R., Williams G.C., Harper M., Boyce J.D. Genome-Wide Investigation of Pasteurella multocida Identifies the Stringent Response as a Negative Regulator of Hyaluronic Acid Capsule Production. Microbiology Spectrum. 2022; 10(2): e00195-22. https://doi.org/10.1128/spectrum.00195-22

14. Clothier K.A., Stoute S., Torain A., Crossley B. Validation of a real-time PCR assay for high-throughput detection of Avibacterium paragallinarum in chicken respiratory sites. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2019; 31(5): 714–718. https://doi.org/10.1177/1040638719866484

15. Hoelzer K. et al. Vaccines as alternatives to antibiotics for food producing animals. Part 1: challenges and needs. Veterinary Research. 2018; 49: 64. https://doi.org/10.1186/s13567-018-0560-8

16. Nikitin G., Pankratov S., Sukhinin A., Prikhodko E., Rozhdestvenskaya T., Ruzina A. Adjuvants for inactivated vaccine against Avibacterium paragallinarum. FASEB Journal. 2022; 36(S1). https://doi.org/10.1096/fasebj.2022.36.S1.R3128

17. Hoelzer K. et al. Vaccines as alternatives to antibiotics for food producing animals. Part 2: new approaches and potential solutions. Veterinary Research. 2018; 49: 70. https://doi.org/10.1186/s13567-018-0561-7

18. Kulappu Arachchige S.N. et al. Effects of immunosuppression on the efficacy of vaccination against Mycoplasma gallisepticum infection in chickens. Veterinary Microbiology. 2021; 260: 109182. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2021.109182

19. Серова Н.Ю., Панкратов С.В., Рузина А.В. Профилактика респираторного микоплазмоза птиц с использованием инактивированных вакцин. Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов. Материалы Международной научно-практической конференции молодых ученых. Лосино-Петровский. 2022; 18–24. https://www.elibrary.ru/ncmxfd

20. Рождественская Т.Н., Каримова Л., Панкратов С.В., Рузина А.В., Томина Е.В. Современные подходы к изготовлению инактивированных вакцин против пастереллеза птиц. Аграрная наука. 2022; 7–8: 68–73. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-361-7-8-68-73

21. Рождественская Т.Н., Панкратов С.В., Сапегина Е.В., Томина Е.В. Испытание новых адъювантов SEPPIC для изготовления вакцин против гемофилеза птиц. Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2020; 11: 23–27. https://www.elibrary.ru/zebedc