Уровень прооксидантно-антиоксидантного статуса у высокопродуктивных коров при коморбидном течении акушерско-гинекологической и ортопедической патологии

Перекисное окисление липидов и антиоксидантная система защиты — это сбалансированная система, отвечающая за обработку и утилизацию липидов в клетках организма. Она играет важную роль в обмене липидов, защите клеток и поддержании здоровья организма в целом. Ее правильное функционирование необходимо для обеспечения оптимальной работы клеток и органов всего организма.

В статье клинико-экспериментально обоснована патогенетическая роль продуктов перекисного окисления липидов и уровня антиоксидантной защиты у коров при эндометритах и гнойнонекротических процессах в области пальца, при коморбидном течении эндометрита и ортопедической патологии. Показано, что полиморбидная манифестация сопровождается более тяжелым течением, чем отдельные заболевания. Установлено, что развитие послеродового эндометрита и гнойнонекротических поражений конечностей у коров сопровождается высокодостоверным увеличением в сыворотке крови продуктов ПОЛ на фоне снижения количества антиоксидантных ферментов, за исключением церулоплазмина. При этом указанные изменения сопровождаются резким скачком при коморбидном течении эндометрита и ортопедической патологии у высокопродуктивных животных.

1. Руденко П.А., Ватников Ю.А., Руденко А.А., Руденко В.Б. Эпизоотический анализ животноводческих ферм, неблагополучных по факторным инфекциям. Научная жизнь. 2020; 15(4): 572–585. https://doi.org/10.35679/1991-9476-2020-15-4-572-585

2. Калашников В.А. Определение чувствительности к антибиотикам микрофлоры, выделенной из половых путей больных эндометритом коров. Ветеринарна медицина. Міжвідомчий тематичний науковий збірник. Харків. 2004; 83: 107–110.

3. Barański W., Baryczka A., Zduńczyk S., Tobolski D., Janowski T. Prevalence of subclinical endometritis in dairy cows that recovered after treatment of clinical endometritis with cephapirin and PGF2α . Theriogenology. 2022; 192: 166–171. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2022.08.031

4. Nyabinwa P., Kashongwe O.B., Habimana J.P., d’Andre Hirwa C., Bebe B.O. Estimating prevalence of endometritis in smallholder zero-grazed dairy cows in Rwanda. Tropical Animal Health and Production. 2020; 52(6): 3135–3145. https://doi.org/10.1007/s11250-020-02337-z

5. Gonzalez-Rivas P.A., Chauhan S.S., Ha M., Fegan N., Dunshea F.R., Warner R.D. Effects of heat stress on animal physiology, metabolism, and meat quality: A review. Meat Science. 2020; 162: 108025. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2019.108025

6. Osawa T. Predisposing factors, diagnostic and therapeutic aspects of persistent endometritis in postpartum cows. Journal of Reproduction and Development. 2021; 67(5): 291–299. https://doi.org/10.1262/jrd.2021-052

7. Юлдашбаев Ю.А., Ватников Ю.А., Руденко П.А., Руденко А.А. Особенности функционального состояния организма овец при стрессе. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство. 2022; 17(2): 193–202. https://doi.org/10.22363/2312-797x-2022-17-2-193-202

8. Hulek M., Sommerfeld-Stur I., Kofler J. Prevalence of digital dermatitis in first lactation cows assessed at breeding cattle auctions. The Veterinary Journal. 2010; 183(2): 161–165. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2008.11.001

9. Scarsella E., Zecconi A., Cintio M., Stefanon B. Characterization of Microbiome on Feces, Blood and Milk in Dairy Cows with Different Milk Leucocyte Pattern. Animals. 2021; 11(5): 1463. https://doi.org/10.3390/ani11051463

10. Rudenko A., Glamazdin I., Lutsay V., Sysoeva N., Tresnitskiy S., Rudenko P. Parasitocenoses in cattle and their circulation in small farms. E3S Web of Conferences. 2022; 363: 03029. https://doi.org/10.1051/e3sconf/202236303029

11. Todhunter D.A., Smith K.L., Hogan J.S., Schoenberger P.S. Gram-negative bacterial infections of the mammary gland in cows. American Journal of Veterinary Research. 1991; 52(2): 184–188.

12. Shearer J.K., van Amstel S.R. Pathogenesis and Treatment of Sole Ulcers and White Line Disease. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2017; 33(2): 283–300. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2017.03.001

13. Kofler J., Geissbühler U., Steiner A. Diagnostic Imaging in Bovine Orthopedics. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2014; 30(1): 11–53. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2013.11.003

14. Basbas C. et al. Unveiling the microbiome during post-partum uterine infection: a deep shotgun sequencing approach to characterize the dairy cow uterine microbiome. Animal Microbiome. 2023; 5: 59. https://doi.org/10.1186/s42523-023-00281-5

15. de Lima F.S. Recent advances and future directions for uterine diseases diagnosis, pathogenesis, and management in dairy cows. Animal Reproduction. 2020; 17(3): e20200063. https://doi.org/10.1590/1984-3143-AR2020-0063

16. Skovorodin E., Bogolyuk S., Yurina A. Clinical, laboratory, and morphological diagnosis of diseases in the oviducts and paraovarian structures of cows. Canadian Journal of Veterinary Research. 2022; 86(3): 194–202.

17. Belaid M.A., Rodriguez-Prado M., López-Suárez M., Rodríguez-Prado D.V., Calsamiglia S. Prepartum behavior changes in dry Holstein cows at risk of postpartum diseases. Journal of Dairy Science. 2021; 104(4): 4575–4583. https://doi.org/10.3168/jds.2020-18792

18. Liu Z. et al. Application of Flow Cytometry in the Diagnosis of Bovine Epidemic Disease. Viruses. 2023; 15(6): 1378. https://doi.org/10.3390/v15061378

19. Dutton-Regester K.J., Barnes T.S., Wright J.D., Alawneh J.I., Rabiee A.R. A systematic review of tests for the detection and diagnosis of foot lesions causing lameness in dairy cows. Preventive Veterinary Medicine. 2018; 149: 53–66. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2017.11.003

20. Mudroň P., Rehage J., Qualmann K., Sallmann H.P., Scholz H. A Study of Lipid Peroxidation and Vitamin E in Dairy Cows with Hepatic Insufficiency. Journal of Veterinary Medicine Series A. 1999; 46(4): 219–224. https://doi.org/10.1046/j.1439-0442.1999.00206.x

21. Руденко П.А. Интенсивность перекисного окисления липидов и активность антиоксидантной системы кошек при гнойно-воспалительных процессах. Ветеринария. 2016; (10): 45–48. https://www.elibrary.ru/wzixjh

22. Kapusta A., Kuczyńska B., Puppel K. Relationship between the degree of antioxidant protection and the level of malondialdehyde in high-performance Polish Holstein-Friesian cows in peak of lactation. PLoS ONE. 2018; 13(3): e0193512. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0193512

23. Al-Qudah K.M. Oxidant and antioxidant profile of hyperketonemic ewes affected by pregnancy toxemia. Veterinary Clinical Pathology. 2011; 40(1): 60–65. https://doi.org/10.1111/j.1939-165X.2011.00284.x

24. Esmaeilnejad B., Tavassoli M., Samiei A., Hajipour N., Imani-Baran A., Farhang-Pajuh F. Evaluation of oxidative stress and antioxidant status, serum trace mineral levels and cholinesterases activity in cattle infected with Anaplasma marginale. Microbial Pathogenesis. 2018; 123: 402–409. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2018.07.039