Связь полиморфизма гена FSHR с воспроизводительными качествами коров голштинской породы

Актуальность. Расширение представлений о механизмах гормональной регуляции полового цикла коров дало возможность разработать большое число программ синхронизации. Это позволяет в некоторой степени решать проблемы, связанные со снижением воспроизводства стада на фоне растущей молочной продуктивности. Параллельно ведется активный поиск биомаркеров, связанных с фертильностью коров, а также для выявления животных, имеющих высокий овариальный ответ на введение экзогенных гонадотропинов.

Цель работы — изучение полиморфизма гена FSHR и его ассоциации с показателями воспроизводства у коров черно-пестрой голштинизрованной породы.

Результаты. По результатам генотипирования коров (n = 128) по гену FSHR определена частота встречаемости генотипа СС на уровне 0,601, генотипа CG — 0,360, GG — 0,031. Установлено, что для плодотворного осеменения особям с генотипом CG требуется меньшее число осеменений. В случном возрасте кратность осеменения телок с генотипом CG составила 1,43, что меньше, чем у телок с генотипом CC — 1,60 (р < 0,001). После первого отела коровы с генотипом CG активнее отвечали на гормональную стимуляцию в послеотельный период. Интервал от первого до плодотворного осеменения у коров с генотипом CG был равен 34,7 дня, у коров с генотипом CC — 57,2 дня (р < 0,05). Число стельных коров с генотипом CG, повторно осемененных по факту естественной охоты, было в 2,1 раза выше, чем число коров с генотипом CC (66,7% и 31,2%). Предположено, что экзогенное введение гормонов оказывает стимулирующее действие на систему «гипоталамус — гипофиз — гонады» у коров с генотипом CG, что приводит к выработке собственных гормонов, ответственных за регуляцию полового цикла.

1. Панкратова А.В., Косовский Г.Ю., Насибов Ш.Н. Синхронизация охоты коров в молочном скотоводстве. Ветеринарная патология. 2016; (2): 45‒49. https://elibrary.ru/yzarcl

2. Jeong J.-K., Kim U.-H., Kang H.-G., Kim I.-H. Selective use of a modified pre-synchronization-Ovsynch and resynchronization reproductive strategy in dairy herds: A field application study. Reproduction in Domestic Animals. 2021; 57(1): 45‒54. https://doi.org/10.1111/rda.14027

3. Гальченко В.А., Перерядкина С.П., Никитин Г.С., Авдеенко В.С., Лисиченко Г.О. Эффективность синхронизации половой охоты у коров на высокотехнологичном молочном модернизированном предприятии. Международный вестник ветеринарии. 2022; (4): 395‒400. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.4.395

4. Медведев Г.Ф., Петров Д.В. Эффективность гормонального контроля репродуктивной функции коров. Животноводство и ветеринарная медицина. 2021; (3): 31‒35. https://elibrary.ru/zpqlyg

5. Христиановский П.И., Сеитов М.С., Платонов С.А., Медетов Е.С., Алдыяров Т.Б. Сравнительный анализ эффективности фронтального осеменения коров при различных схемах синхронизации половой охоты. Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2021; (6): 217‒220. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-92-6-217-221

6. Houde A., Lambert A., Silversides D.W., Lussier J.G., Saumande J. Structure of the bovine follicle-stimulating hormone receptor complementary DNA and expression in bovine tissues. Molecular Reproduction & Development. 1994; 39(2): 127‒135. https://doi.org/10.1002/mrd.1080390202

7. Cory A.T., Price C.A., Lefebvre R., Palin M.-F. Identification of single nucleotide polymorphisms in the bovine follicle-stimulating hormone receptor and effects of genotypes on superovulatory response traits. Animal Genetics. 2013; 44(2): 197–201. https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2012.02380.x

8. Kishi H., Kitahara Y., Imai F., Nakao K., Suwa H. Expression of the gonadotropin receptors during follicular development. Reproductive Medicine and Biology. 2018; 17(1): 11‒19. https://doi.org/10.1002/rmb2.12075

9. Ширяев Г.В., Притужалова А.О., Никитин Г.С., Никиткина Е.В., Мусидрай А.А., Алексеева А.Ю. Репродуктивная функция коров (Bos taurus) под влиянием различных кисспептинов (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2023; 58(6): 974‒989. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2023.6.974rus

10. Khor S., Lyu Q., Kuang Y., Lu X. Novel FSHR variants causing female resistant ovary syndrome. Molecular Genetics & Genomic Medicine. 2019; 8(2): e1082. https://doi.org/10.1002/mgg3.1082

11. Caixeta E.S., Ripamonte P., Franco M.M., Junior J.B., Dode M.A.N. Effect of follicle size on mRNA expression in cumulus cells and oocytes of Bos indicus: an approach to identify marker genes for developmental competence. Reproduction, Fertility and Development. 2009; 21(5): 655‒664. https://doi.org/10.1071/RD08201

12. Бригида А.В., Бурсаков С.А., Скачкова О.А., Сорокин В.И., Ковальчук С.Н. Факторы, влияющие на реакционный ответ яичников коровдоноров эмбрионов при введении экзогенных гонадотропинов (обзор). Достижения науки техники АПК. 2018; 32(6): 56‒63. https://doi.org/10.24411/0235-2451-2018-10614

13. Позовникова М.В., Ротарь Л.Н. Оценка коров голштинизированной черно-пестрой породы по полиморфизму гена FSHR. Международный вестник ветеринарии. 2019; (2): 161–165. https://elibrary.ru/hfzjwu

14. Nikitkina E., Krutikova A., Musidray A., Plemyashov K. Search for Associations of FSHR, INHA, INHAB, PRL, TNP2 and SPEF2 Genes Polymorphisms with Semen Quality in Russian Holstein Bulls (Pilot Study). Animals. 2021; 11(10): 2882. https://doi.org/10.3390/ani11102882