Развитие телочек в зависимости от живой массы при рождении и уровня иммуноглобулинов в молозивный период

Изучено развитие телят голштинской породы, полученных от спермы разных способов замораживания, а также в зависимости от уровня иммуноглобулинов в сыворотке крови в молозивный период (на третьи сутки жизни), в зависимости от живой массы при рождении. Работа выполнена в зимний период на базе ООО «Агрофирма Заря» совместно с ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста и ФГБНУ ВНИИплем на основании договора о научном сотрудничестве.
Всего в опыте использовали данные анализа 36 телочек при разных критериях оценки: в зависимости от использования спермы, заготовленной разными способами: I группа (опытная) — телочки, полученные от разделенной по полу спермы (n = 18), II подгруппа (контрольная) — телочки, полученные от спермы, замороженной традиционным способом (n = 18). В зависимости от живой массы при рождении: I группа — живая масса при рождении до 35 кг (n = 11), II группа — 35–39 кг (n = 14), III группа — 40 кг и выше (n = 11). В зависимости от концентрации IgG разделили на три группы: I группа (n = 6) — 6,0–6,5 г/дл, II группа (n = 14) — 6,6–7,5 г/дл, III группа (n = 16) — 7,6 г/дл и выше. Установлено, что живая масса телят имеет достоверное отличие при р < 0,05, то есть телочки, родившиеся от спермы, заготовленной традиционным способом, имели на 3,5 кг большую живую массу по сравнению с телочками, родившимися от разделенной по полу. Расхождение сохраняется до 5-месячного возраста, а в годовалом возрасте, наоборот, телята, родившиеся от разделенной по полу спермы, будут иметь живую массу на 9,1 кг больше, чем телочки, родившиеся от традиционно заготовленной спермы. Аналогичные результаты при рождении отмечены и при анализе суточных привесов (р < 0,01). Выявлено, что телята, имеющие разную живую массу при рождении, имели достоверное различие до 5-месячного возраста, а после 6-месячного возраста всё постепенно сглаживается. У 83% телят содержание IgG в сыворотке крови выше уровня — 6,6 г/дл. Только 16,7% телят (n = 6) имели сравнительно низкий показатель IgG в сыворотке крови на 3-й день жизни. Группы телочек по содержанию IgG имели высокий уровень достоверности (р < 0,01). Глобулины в сыворотке крови не имели существенного влияния на дальнейшее развитие телят.

1. Санова З.С., Мазуров В.Н. Применение сексированного семени быков-производителей в племенных хозяйствах Калужской области. Аграрная наука. 2023; (4): 75-79. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-369-4-75-79

2. Дунин М.И. Вызовы и реалии импорта племенной продукции — семени, эмбрионов молочного скота в Российскую Федерацию. Зоотехния. 2024; (6): 30-32. https://elibrary.ru/rwrbes

3. Sales J.N.S. etal. Timing of insemination and fertility in dairy and beef cattle receiving timed artificial insemination using sex-sorted sperm. Theriogenology. 2011; 76(3): 427-435. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.02.019

4. Абилов А.И., Козменков П.Л., Иолчиев Б.С., Устименко А.В. Качественные характеристики замороженно-оттаянного семени (обычное и разделенное по полу) у быков-производителей голштинской черно-пестрой породы и возраст полового созревания полученных от них телочек. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2023; (4): 95-109. https://doi.org/10.26897/0021-342X-2023-4-95-109

5. Maicas C. et al. Fertility of fresh and frozen sex-sorted semen in dairy cows and heifers in seasonal-calving pasture-based herds. Journal of Dairy Science. 2019; 102(11): 10530-10542. https://doi.org/10.3168/jds.2019-16740

6. Смердина Т.В., Зeмлянухинa Т.Н. Влияние сексированного семени на воспроизводительные качества коров. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2018; (9): 96-102. https://elibrary.ru/yplrel

7. DeJarnette J.M., Leach M.A., Nebel R.L., Marshall C.E., McCleary C.R., Moreno J.F. Effects of sex-sorting and sperm dosage on conception rates of Holstein heifers: Is comparable fertility of sex-sorted and conventional semen plausible? Journal of Dairy Science. 2011; 94(7): 3477-3483. https://doi.org/10.3168/jds.2011-4214

8. Norman H.D., Hutchison J.L., Miller R.H. Use of sexed semen and its effect on conception rate, calf sex, dystocia, and stillbirth of Holsteins in the United States. Journal of Dairy Science. 2010; 93(8): 3880-3890. https://doi.org/10.3168/jds.2009-2781

9. Tubman L.M., Brink Z., Suh T.K., Seidel G.E. Characteristics of calves produced with sperm sexed by flow cytometry/cell sorting. Journal of Animal Science. 2004; 82(4): 1029-1036. https://doi.org/10.2527/2004.8241029x

10. Healy A.A., House J.K., Thomson PC. Artificial insemination field data on the use of sexed and conventional semen in nulliparous Holstein heifers. Journal of Dairy Science. 2013; 96(3): 1905-1914. https://doi.org/10.3168/jds.2012-5465

11. Djedovic R., Bogdanovic V., Stanojevic D., Nemes Z., Gaspardy A., Cseh S. Involuntary reduction in vigour of calves born from sexed semen. Acta Veterinaria Hungarica. 2016; 64(2): 229-238. https://doi.org/10.1556/004.2016.023

12. Furman-Fratczak K., Rzasa A., Stefaniak T. The influence of colostral immunoglobulin concentration in heifer calves’ serum on their health and growth. Journal of Dairy Science. 2011; 94(11): 5536-5543. https://doi.org/10.3168/jds.2010-3253

13. Харитонова О.В., Харитонов Л.В., Великанов В.И., Кляпнев А.В. Исследование эффективности различных способов повышения колострального иммунитета у новорожденных телят. Проблемы биологии продуктивных животных. 2018; (2): 81-93. https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2018.2.81-93

14. Федоров Ю.Н., Клюкина В.И., Богомолова О.А., Романенко М.Н., Царькова К.Н. Пассивный иммунитет у новорожденных телят — основа выращивания здорового молодняка. Аграрно-пищевые инновации. 2019; (3): 27-33. https://doi.org/10.31208/2618-7353-2019-7-27-33

15. Hue D.T., Skirving R., Chen T., Williams J.L., Bottema C.D.K., Petrovski K. Colostrum source and passive immunity transfer in dairy bull calves. Journal of Dairy Science. 2021; 104(7): 8164-8176. https://doi.org/10.3168/jds.2020-19318

16. Thomas J.M. et al. Evaluation of SexedULTRA 4M™ sex-sorted semen in timed artificial insemination programs for mature beef cows. Theriogenology. 2019; 123: 100-107. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2018.09.039