Влияние интервала между сеансами OPU на результативность получения ооцитов при интенсивном использовании доноров у крупного рогатого скота различных пород

В статье представлены данные о результативности трансвагинального УЗИ-ассистированного получения ооцитов (OPU) в зависимости от интервала между сеансами при интенсивном использовании доноров у крупного рогатого скота различных пород. В эксперименте были использованы доноры холмогорской (n = 7), истобенской (n = 7) и тагильской (n = 4) пород крупного рогатого скота. На каждом из доноров были выполнены по 4 сеанса OPU c двумя различными интервалами — 4 сут. и 3 сут. Наибольшее число фолликулов было выявлено у телок холмогорской породы (13,23 ± 0,51 в против 9,09 ± 0,44 и 9,38 ± 0,61 фолликулов у телок истобенской и первотелок тагильской пород соответственно), при этом интервал между сеансами не оказывал достоверного влияния на данный показатель. У первотелок тагильской породы при использовании интервала между сеансами 3 сут. по сравнению с 4 сут. отмечалось получение большего числа ооцит-кумулюсных комплексов (ОКК) — 5,69 ± 0,64 против 4,06 ± 0,59 ОКК (p < 0,05). У доноров холмогорской и истобенской пород достоверных различий выявлено не было — соответственно, 8,32 ±0,75 против 7,82 ± 0,59 ОКК и 3,82 ± 0,40 против 3,52 ± 0,57 ОКК. Интервал между сеансами не оказывал заметного влияния на качество полученных ОКК. Таким образом, показано отсутствие достоверного влияния различного интервала между сеансами OPU на число полученных ОКК, пригодных для получения эмбрионов in vitro различий у всех трех исследованных пород (5,75 ± 0,54 против 6,43 ± 0,66, 2,55 ± 0,45 против 2,79 ± 0,48 и 2,88 ± 0,53 против 4,00 ± 0,50 у доноров холмогорской, истобенской и тагильской пород соответственно). Это позволяет рекомендовать проведение OPU с попеременным интервалом 4 сут. и 3 сут. при интенсивном использовании доноров крупного рогатого скота вышеназванных пород для получения ооцитов.

1. Nanda R. etal. Ovum Pick-up in Ruminants. Animal Reproduction Update. 2022; 1(1): 46-50.

2. Ferre L.B., Kjelland M.E., Strobech L.B., Hyttel P., Mermillod P, Ross P J. Review: Recent advances in bovine in vitro embryo production: reproductive biotechnology history and methods. Animal. 2020; 14(5): 991-1004. https://doi.org/10.1017/S1751731119002775

3. Viana J.H.M. 2021 Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals. Embryo Technology Newsletter. 2022; 40(4): 22-40.

4. Boler R., Kasimanickam R. Ovum pick up, in vitro embryo production, and embryo transfer as value-added theriogenology service in miniature Hereford cattle operation. Clinical Theriogenology. 2024; 16: 10528. https://doi.org/10.58292/CT.v16.10528

5. Boni R. Ovum pick-up in cattle: a 25 yr retrospective analysis. Animal Reproduction. 2012; 9(3): 362-369.

6. Никитин Г.С. Современные подходы при получении и криоконсервации эмбрионов крупного рогатого скота in vitro. Международный вестник ветеринарии. 2021; (3): 192 205. https://doi.org/10.17238/issn2072-2419.2021.3.192

7. Чинаров Р.Ю. Развитие технологии прижизненного получения ооцитов у коров: современное состояние и направления исследований (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2024; 59(2): 194-220. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2024.2.194rus

8. Пестис В.К., Голубец Л.В., Дешко А.С., Кысса И.С., Попов М.В. Получение ооцитов коров путем трансвагинальной пункции фолликулов. Доклады национальной академии наук Беларуси. 2016; 60(1): 123-128. https://www.elibrary.ru/vspopl

9. Ferre L.B. etal. Transvaginal ultrasound-guided oocyte retrieval in cattle: State-of-the-art and its impact on the in vitro fertilization embryo production outcome. Reproduction in Domestic Animals. 2023; 58(3): 363-378. https://doi.org/10.1111/rda.14303

10. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Сингина Г.Н. Результативность прижизненного получения ооцитов у коров тагильской породы. Ветеринария и кормление. 2024; (1): 89-94. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2024-1-19

11. Li F., Chen X., Pi W., Liu C., Shi Z. Collection of Oocytes Through Transvaginal Ovum Pick-up for In Vitro Embryo Production in Nanyang Yellow Cattle. Reproduction in Domestic Animals. 2007; 42(6): 666-670. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2006.00842.x

12. Ali S., Lemma A., Degefa T., Jemal J. Effect of breed, parity and frequency of collection on quality and quantity of OPU derived oocytes. World News of Natural Sciences. 2021; 34: 88-97.

13. Ding L.-J. etal. Different intervals of ovum pick-up affect the competence of oocytes to support the preimplantation development of cloned bovine embryos. Molecular Reproduction and Development. 2008; 75(12): 1710-1715. https://doi.org/10.1002/mrd.20922

14. Голубец Л.В. Эффективность различных режимов использования доноров при получении эмбрионов крупного рогатого скота in vitro в системе трансвагинальной аспирации ооцитов (ТАО). Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена “Знак Почета" государственная академия ветеринарной медицины». 2021; 57(2): 87-91. https://www.elibrary.ru/olfdxk

15. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Сингина Г.Н., Шедова Е.Н. Результативность получения ооцитов при проведении повторной серии трансвагинальной УЗИ-ассистированной пункции фолликулов у телок симментальской породы. Аграрная наука. 2024; (9): 65-70. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-386-9-65-70