Динамика показателей антиоксидантной системы и продуктов перекисного окисления липидов у коров при коморбидном течении акушерско-гинекологической и ортопедической патологии

В настоящей рукописи проведен прооксидантно-антиоксидантный контроль эффективности лечения различными схемами высокопродуктивных коров при коморбидном течении послеродового острого гнойно-катарального эндометрита и гнойно-некротического заболевания в области пальца.

В результате проведенных исследований установлено, что наиболее эффективным комплексным лечением высокопродуктивных коров при коморбидном течении послеродового эндометрита и ортопедической патологии оказалась схема I опытной группы, о чем говорит общее состояние опытных животных, а также положительная динамика роста количества показателей антиоксидантных ферментов на фоне снижения уровня количества продуктов липопероксидации в сыворотке крови. Установлено, что комплексное лечение высокопродуктивных коров по схеме I способствует более быстрому общему клиническому улучшению уже на 9,42 ± 0,25-й день (***), наступлению половой охоты на 52,00 ± 0,88-й день (***), отсутствию осложнений при сравнении с базовым лечением животных IV опытной группы. Следует отметить, что в пробах сыворотки крови животных I опытной группы значительно быстрее снижается уровень показателей продуктов ПОЛ (ДК, МДА, МСМ) на фоне увеличения показателей системы АОС (СОД, КТ, ГЛП, ОАОА) при сравнении с другими опытными группами, достигая референсных значений.

1. Badura R., Buczek A., Samborski Z., Szymonis-Szymanowski W., Twardon J. Einfluß technopathiebedingter Streßfaktoren auf die Fruchtbarkeit des Rinde. Deutsche Tierärztliche Wochenschrift. 1992; 99(5): 193‒194.

2. Hernandez J., Shearer J.K., Webb D.W. Effect of lameness on the calving-to-conception interval in dairy cows. Journal of.the American Veterinary Medical Association. 2001; 218(10): 1611‒1614. https://doi.org/10.2460/javma.2001.218.1611

3. Луцай В.И., Солошенко Н.Ю., Нефедов А.М., Сибирцев В.Д., Руденко А.А., Руденко П.А. Микробный пейзаж при послеродовом остром гнойно-катаральном эндометрите у коров. Аграрная наука. 2024; (3): 66‒71. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-380-3-66-71

4. Rezac D.J., Thomson D.U., Siemens M.G., Prouty F.L., Reinhardt C.D., Bartle S.J. A survey of gross pathologic conditions in cull cows at slaughter in the Great Lakes region of the United States. Journal of.Dairy Science. 2014; 97(7): 4227–4235. https://doi.org/10.3168/jds.2013-7636

5. Rudenko A., Glamazdin I., Lutsay V., Sysoeva N., Tresnitskiy S., Rudenko P. Parasitocenoses in cattle and their circulation in small farms. E3S Web of.Conferences. 2022; 363: 03029. https://doi.org/10.1051/e3sconf/202236303029

6. Vatnikov Y. et al. Research on the antibacterial and antimycotic effect of the phytopreparation Farnesol on biofilm-forming microorganisms in veterinary medicine. International Journal of.Pharmaceutical Research. 2020; 12(S2): 1481–1492. https://doi.org/10.31838/ijpr/2020.SP2.164

7. Földi J. et al. Bacterial complications of postpartum uterine involution in cattle. Animal Reproduction Science. 2006; 96(3–4): 265‒281. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2006.08.006

8. Луцай В.И., Сибирцев В.Д., Нефедов А.М., Руденко П.А. Уровень прооксидантно-антиоксидантного статуса у высокопродуктивных коров при коморбидном течении акушерско-гинекологической и ортопедической патологии. Аграрная наука. 2024; (9): 34–39. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-386-9-34-39

9. Liu Z. et al. Application of Flow Cytometry in the Diagnosis of Bovine Epidemic Disease. Viruses. 2023; 15(6): 1378. https://doi.org/10.3390/v15061378

10. Skovorodin E., Bogolyuk S., Yurina A. Clinical, laboratory, and morphological diagnosis of diseases in the oviducts and paraovarian structures of cows. Canadian Journal of.Veterinary Research. 2022; 86(3): 194–202.

11. Руденко П.А. Интенсивность перекисного окисления липидов и активность антиоксидантной системы кошек при гнойновоспалительных процессах. Ветеринария. 2016; (10): 45–48. https://www.elibrary.ru/wzixjh

12. Spagnuolo M.S., Sarubbi F., Rossetti C., Grazioli G., Di Meo G.P., Iannuzzi L. Effect of dioxin exposure on several indices of blood redox status in lactating buffalo cows. Journal of.Dairy Research. 2011; 78(2): 154–159. https://doi.org/10.1017/S0022029911000021

13. Takahashi M. Oxidative Stress and Redox Regulation on In Vitro Development of Mammalian Embryos. Journal of.Reproduction and Development. 2012; 58(1): 1–9. https://doi.org/10.1262/jrd.11-138n

14. Sies H. Oxidative stress: a concept in redox biology and medicine. Redox Biology. 2015; 4: 180–183. https://doi.org/10.1016/j.redox.2015.01.002

15. Van Breusegem F., Remacle C. Oxidative stress responses in plants. Free Radical Biology and Medicine. 2023; 204: 394. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2023.05.012

16. Zhao B. et al. Supplementation with kaempferol relieves oxidative stress and enhances development of early bovine embryos in vitro. Reproduction in Domestic Animals. 2022; 57(9): 1007–1015. https://doi.org/10.1111/rda.14167

17. Abeyta M.A. et al. Effects of dietary antioxidant supplementation on metabolism and inflammatory biomarkers in heat-stressed dairy cows. Journal of.Dairy Science. 2023; 106(2): 1441–1452. https://doi.org/10.3168/jds.2022-22338

18. Lashkari S., Habibian M., Jensen S.K. A Review on the Role of Chromium Supplementation in Ruminant Nutrition-Effects on Productive Performance, Blood Metabolites, Antioxidant Status, and Immunocompetence. Biological Trace Element Research. 2018; 186(2): 305–321. https://doi.org/10.1007/s12011-018-1310-5

19. Gomes da Silva G. et al. Feeding reduced levels of trace minerals in proteinate form and selenium-yeast to transition cows: Performance, trace minerals, and antioxidant status, peripheral neutrophil activity, and oocyte quality. Journal of.Dairy Science. 2023; 106(4): 3023–3042. https://doi.org/10.3168/jds.2022-21939

20. Puppel K., Kapusta A., Kuczyńska B. The etiology of oxidative stress in the various species of animals, a review. Journal of.the Science of.Food and Agriculture. 2015; 95(11): 2179–2184. https://doi.org/10.1002/jsfa.7015