Влияние кормовой добавки на основе биомассы дрожжей Rhodosporidium diobovatum на яичную продуктивность перепелов

Актуальность. Большое влияние на продуктивность сельскохозяйственной птицы оказывает обеспеченность высококачественным протеиновыми кормами и биологически активными веществами. Высокая биологическая активность каротиноидов вызывает интерес и обуславливает поиск эффективных способов их получения и применения. Экспериментальные данные о применении астаксантина в питании теплокровных животных ограничены.

Методы. В рационы перепелов 2, 3 и 4 групп дополнительно вводили кормовую добавку, полученную путем культивирования дрожжей Rodosporidium diobovatum, из расчета 0,4; 0,8 и 1,2 г/кг живой массы соответственно. Отбор проб комбикорма проводили по ГОСТ 13496.0-2016, отбор проб и оценку качества полученных яиц — по ГОСТ 31655-2012. Химический анализ яиц включал определение сухого вещества, сырого протеина, сырого жира, сырой золы, кальция, фосфора с предварительной пробоподготовкой. Оценку яичной продуктивности проводили с начала яйцекладки. Определяли массу яиц, белка, желтка, индексы формы яиц, белка, желтка, единицу ХАУ по общепринятым методикам, содержание каротиноидов в яичном желтке — по ГОСТ Р 54058-2010.

Результаты. Скармливание перепелам-несушкам кормовой добавки, полученной путем культивирования дрожжей Rhodosporidium diobovatum, способствовало повышению яйценоскости на 28,9%, 13,9% и 4,8%, интенсивности яйценоскости на 20,8%, 10,0% и 3,5%, улучшению морфологических показателей, инкубационных качеств и пищевой ценности перепелиных яиц, а также содержанию каротиноидов в желтке на 36,4%, 30,9% и 3,6% соответственно. Наилучшие показатели яичной продуктивности были получены у птицы 2 и 3 групп.

1. Андрианова Е.Н. Егоров И.А., Григорьева Е.Н., Шевяков А.Н., Пронин В.В. Люпин в кормлении кур-несушек родительского стада. Сельскохозяйственная биология. 2019; 54(2): 326–336. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.2.326rus

2. Волкова С.В., Белокурова Е.С., Рубанов Д.А. Дрожжи рода Rhodotorula — перспективный источник каротиноидов для кормопроизводства. Пищевая индустрия в современных условиях: тренды и инновации. Сборник научных статей Международной научно-практической конференции. Орел: ОрелГАУ. 2023; 2: 298–302. EDN FSTSFX

3. Мифтахутдинов А.В., Дихтярук И.Н. Влияние антистрессового фармакологического комплекса «СПАО» на эффективность профилактической иммунизации кур против болезни Ньюкасла. Аграрная наука. 2020; (3): 13–16. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2020-336-3-13-16

4. Pagels F., Vasconcelos V., Guedes A.C. Carotenoids from Cyanobacteria: Biotechnological Potential and Optimization Strategies. Biomolecules. 2021; 11(5): 735. https://doi.org/10.3390/biom11050735

5. Maoka T. Carotenoids as natural functional pigments. Journal of Natural Medicines. 2020; 74(1): 1–16. https://doi.org/10.1007/s11418-019-01364-x

6. Ashokkumar V. et al. Technological advances in the production of carotenoids and their applications — A critical review. Bioresource Technology. 2023; 367: 128215. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2022.128215

7. Foong L.C., Loh C.W.L., Ng H.S., Lan J.C.-W. Recent development in the production strategies of microbial carotenoids. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2021; 37(1): 12. https://doi.org/10.1007/s11274-020-02967-3

8. Novoveská L., Ross M.E., Stanley M.S., Pradelles R., Wasiolek V., Sassi J.-F. Microalgal Carotenoids: A Review of Production, Current Markets, Regulations, and Future Direction. Marine Drugs. 2019; 17(11): 640. https://doi.org/10.3390/md17110640

9. Bhosale P., Jogdand V.V., Gadre R.V. Stability of β-carotene in spray dried preparation of Rhodotorula glutinis mutant 32. Journal of Applied Microbiology. 2003; 95(3): 584–590. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2003.02018.x

10. Колпакова В.В. и др. Использование экологически безопасного микромицета рода Rhodotorula для получения кормового каротинсодержащего концентрата. Юг России: экология, развитие. 2022; 17(4): 61–78. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2022-4-61-78

11. Shashikala K.B., Hemalatha B.N., Pooja S., Patil S.J. Nutraceutical Antioxidants and Their Influence on Reproduction. Keservani R.K., Patil S.J., Aranha I. (eds.). Nutraceuticals for the Treatment and Prevention of Sexual Disorders. Apple Academic Press. 2025; 399 421. https://doi.org/10.1201/9781003503774-21

12. Surai P.F., Speake B.K., Sparks N.H.C. Carotenoids in Avian Nutrition and Embryonic Development. 1. Absorption, Availability and Levels in Plasma and Egg Yolk. The Journal of Poultry Science. 2001; 38(1): 1–27. https://doi.org/10.2141/jpsa.38.1

13. Surai P.F., Speake B.K., Sparks N.H.C. Carotenoids in Avian Nutrition and Embryonic Development. 2. Antioxidant Properties and Discrimination in Embryonic Tissues. The Journal of Poultry Science. 2001; 38(2): 117–145. https://doi.org/10.2141/jpsa.38.117

14. Surai P.F., Bortolotti G.R., Fidgett A.L., Blount J.D., Speake B.K. Effects of piscivory on the fatty acid profiles and antioxidants of avian yolk: studies on eggs of the gannet, skua, pelican and cormorant. Journal of Zoology. 2001; 255(3): 305–312. https://doi.org/10.1017/S0952836901001406

15. Garamszegi L.Z., Biard C., Eens M., Møller A.P., Saino N., Surai P. Maternal effects and the evolution of brain size in birds: Overlooked developmental constraints. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 2007; 31(4): 498–515. https://doi.org/10.1016/j.neubiorev.2006.11.008

16. Surai P.F. Natural Antioxidants in Avian Nutrition and Reproduction. Nottingham: Nottingham University Press. 2002; xvi, 615. ISBN 1-897676-95-6

17. Nair A. et al. Astaxanthin as a King of Ketocarotenoids: Structure, Synthesis, Accumulation, Bioavailability and Antioxidant Properties. Marine Drugs. 2023; 21(3): 176. https://doi.org/10.3390/md21030176

18. Колдаев В.М., Кропотов А.В. Каротиноиды в практической медицине. Тихоокеанский медицинский журнал. 2022; (1): 65–71. https://doi.org/10.34215/1609-1175-2022-1-65-71

19. Møller A.P. et al. Carotenoid-dependent Signals: Indicators of Foraging Efficiency, Immunocompetence or Detoxification Ability?. Avian and Poultry Biology Reviews. 2000; 11(3): 137–159.

20. Blount J.D., Metcalfe N.B., Birkhead T.R., Surai P.F. Carotenoid Modulation of Immune Function and Sexual Attractiveness in Zebra Finches. Science. 2003; 300(5616): 125–127. https://doi.org/10.1126/science.1082142

21. Reboul E. Mechanisms of Carotenoid Intestinal Absorption: Where Do We Stand?. Nutrients. 2019; 11(4): 838. https://doi.org/10.3390/nu11040838

22. Phelan D., Prado-Cabrero A., Nolan J.M. Analysis of Lutein, Zeaxanthin, and Meso-Zeaxanthin in the Organs of Carotenoid Supplemented Chickens. Foods. 2018; 7(2): 20. https://doi.org/10.3390/foods7020020

23. Ren T., Xu M., Lin W., Luo W., Zhang X. Transcriptome sequencing reveals the potential mechanisms of dietary lutein regulation on chicken leg muscle development. Poultry Science. 2024; 103(12): 104265. https://doi.org/10.1016/j.psj.2024.104265

24. Liao Y. et al. Metabolism, Function, Molecular Mechanism, and Application of Carotenoids in Coloration of Aquatic Animals. Reviews in Aquaculture. 2025; 17(2): e70016. https://doi.org/10.1111/raq.70016

25. Николаевич Л.Н., Згировская А.А., Борисовец Д.С. Биологические свойства каротиноидов и их применение в рационе питания сельскохозяйственных животных (обзор). Эпизоотология, иммунобиология, фармакология, санитария. 2023; (1): 53–59. EDN NFJGKO

26. Chang J.-H., Chen Y., Holland D., Grabowski J. Estimating spatial distribution of American lobster Homarus americanus using habitat variables. Marine Ecology Progress Series. 2010; 420: 145–156. https://doi.org/10.3354/meps08849

27. Ambati R.R., Phang S.-M., Ravi S., Aswathanarayana R.G. Astaxanthin: Sources, Extraction, Stability, Biological Activities and Its Commercial Applications—A Review. Marine Drugs. 2014; 12(1): 128–152. https://doi.org/10.3390/md12010128

28. European Food Safety Authority (EFSA). Opinion of the Scientific Panel on additives and products or substances used in animal feed (FEEDAP) on the safety of use of colouring agents in animal nutrition — PART I. General Principles and Astaxanthin. EFSA Journal. 2005; 3(12): 291. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2005.291

29. Rizzardi N. et al. Natural Astaxanthin Is a Green Antioxidant Able to Counteract Lipid Peroxidation and Ferroptotic Cell Death. International Journal of Molecular Sciences. 2022; 23(23): 15137. https://doi.org/10.3390/ijms232315137

30. Edge R., Gaikwad P., Navaratnam S., Rao B.S.M., Truscott G.T. Reduction of oxidized guanosine by dietary carotenoids: A pulse radiolysis study. Archives of Biochemistry and Biophysics. 2010; 504(1): 100–103. https://doi.org/10.1016/j.abb.2010.07.026

31. Abdol Wahab N.R., Meor Mohd Affandi M.M.R., Fakurazi S., Alias E., Hassan H. Nanocarrier System: State-of-the-Art in Oral Delivery of Astaxanthin. Antioxidants. 2022; 11(9): 1676. https://doi.org/10.3390/antiox11091676

32. Ciaraldi T.P., Boeder S.C., Mudaliar S.R., Giovannetti E.R., Henry R.R., Pettus J.H. Astaxanthin, a natural antioxidant, lowers cholesterol and markers of cardiovascular risk in individuals with prediabetes and dyslipidaemia. Diabetes, Obesity and Metabolism. 2023; 25(7): 1985–1994. https://doi.org/10.1111/dom.15070

33. Eldessouki E.A.A. et al. Influence of astaxanthin-enriched Haematococcus pluvialis microalgae on the growth efficacy, immune response, antioxidant capacity, proinflammatory cytokines, and tissue histomorphology of hybrid red tilapia. Aquaculture International. 2024; 32(6): 7447–7468. https://doi.org/10.1007/s10499-024-01524-1

34. Nakagawa K. et al. Antioxidant effect of astaxanthin on phospholipid peroxidation in human erythrocytes. British Journal of Nutrition. 2011; 105(11): 1563–1571. https://doi.org/10.1017/S0007114510005398

35. Остапчук П.С., Зубоченко Д.В., Куевда Т.А. Роль антиоксидантов и использование их в животноводстве и птицеводстве (обзор). Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2019; 20(2): 103–117. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2019.20.2.103-117

36. Довыденкова М.В., Колодина Е.Н., Никанова Д.А., Логвинова Т.И., Артемьева О.А. Эффективность использования каротинсинтезирующих дрожжей Rhodotorula spp. в кормлении сельскохозяйственных животных. Животноводство и кормопроизводство. 2024; 107(2): 149–169. https://doi.org/10.33284/2658-3135-107-2-149

37. El-Banna A., El-Razek A., El-Mahdy A. Some Factors Affecting the Production of Carotenoids by Rhodotorula glutinis var. Glutinis. Food and Nutrition Sciences. 2012; 3(1): 64–71. https://doi.org/10.4236/fns.2012.31011

38. Ge Y., Huang K., Xie W., Xu C., Yao Q., Liu Y. Effects of Rhodotorula mucilaginosa on the Immune Function and Gut Microbiota of Mice. Frontiers in Fungal Biology. 2021; 2: 705696. https://doi.org/10.3389/ffunb.2021.705696

39. Elwan H.A.M., Elnesr S.S., Abdallah Y., Hamdy A., El-Bogdady A.H. Red yeast (Phaffia rhodozyma) as a source of Astaxanthin and its impacts on productive performance and physiological responses of poultry. World’s Poultry Science Journal. 2019; 75(2): 273–284. https://doi.org/10.1017/S0043933919000187

40. Wang L., Xie J., Wu W., Li B., Ou J. Excellent microbial cultivation for astaxanthin production and its extraction by Rhodotorula benthica. Med. Res. 2018; 2(4): 180015. https://doi.org/10.21127/yaoyimr20180015

41. Dávila-Ramírez J.L. et al. Effect of yeast culture (Saccharomyces cerevisiae) supplementation on growth performance, blood metabolites, carcass traits, quality, and sensorial traits of meat from pigs under heat stress. Animal Feed Science and Technology. 2020; 267: 114573. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2020.114573

42. Haddad S.G., Goussous S.N. Effect of yeast culture supplementation on nutrient intake, digestibility and growth performance of Awassi lambs. Animal Feed Science and Technology. 2005; 118(3–4): 343–348. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2004.10.003

43. Lei Y., Kim I.H. Effect of Phaffia rhodozyma on performance, nutrient digestibility, blood characteristics, and meat quality in finishing pigs. Journal of Animal Science. 2014; 92(1): 171–176. https://doi.org/10.2527/jas.2013-6749

44. Song B. et al. Dietary Supplementation of Yeast Culture Into Pelleted Total Mixed Rations Improves the Growth Performance of Fattening Lambs. Frontiers in Veterinary Science. 2021; 8: 657816. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.657816

45. Ayiku S., Shen J.-f., Tan B.-p., Dong X.-h., Liu H.-y. Effects of dietary yeast culture on shrimp growth, immune response, intestinal health and disease resistance against Vibrio harveyi. Fish & Shellfish Immunology. 2020; 102: 286–295. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.04.036

46. Srinual O. et al. Can Red Yeast (Sporidiobolus pararoseus) Be Used as a Novel Feed Additive for Mycotoxin Binders in Broiler Chickens?. Toxins. 2022; 14(10): 678. https://doi.org/10.3390/toxins14100678

47. Ядерец В.В., Карпова Н.В., Глаголева Е.В., Петрова К.С., Шибаева А.С., Джавахия В.В. Каротиноиды: обзор основных биотехнологических способов и условий получения. Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. 2024; 14(1): 41–54. https://doi.org/10.21285/achb.905

48. Оздемиров А.А., Крупин Е.О. Регионально ориентированные стратегии повышения эффективности мясного и молочного животноводства в России: опыт Дагестана и Татарстана (2011 2022 гг.). Аграрный вестник Северного Кавказа. 2025; 15(3): 37–52. https://doi.org/10.31279/2949-4796-2025-15-3-35-50

49. Крупин Е.О., Шакиров Ш.К., Тагиров М.Ш. О некоторых результатах использования нового кормового концентрата в рационах дойных коров. Молочное и мясное скотоводство. 2017; (6): 22–25. EDN ZSIEQN

50. Теребова С.В., Никулин Ю.П., Никулина О.А., Черепанова Е.К. Использование кормовой добавки «Левибио» при выращивании молодняка овец. Аграрная наука. 2025; (7): 62–70. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-396-07-62-70.