Влияние добавок разветвленных аминокислот (BCAA: L-изолейцин, L-валин, L-лейцин) в рацион нильской тиляпии (Oreochromis niloticus) на химический состав, энергетическую ценность и аминокислотный профиль мышечной ткани

Изучено влияние различного уровня и соотношения аминокислот с разветвленной цепью (BCAA: L-изолейцин, L-валин, L-лейцин) в комбикормах на химический состав, энергетическую ценность и аминокислотный профиль мышечной ткани нильской тиляпии (Oreochromis niloticus). Эксперимент проведен на четырех группах рыб (одна контрольея и три опытных) в течение 229 суток. Контрольная группа получала основной рацион с содержанием сырого протеина 33,1%. В опытных группах уровень BCAA корректировали путем дополнительного ввода кристаллических аминокислот: группа 1 — изолейцин 30% от исходного содержания; группа 2 — изолейцин 20%, валин 20%, лейцин 40%; группа 3 — по 40% каждой из трех аминокислот. В группе 3 зафиксировано максимальное содержание сырого протеина (21,3% на натуральное вещество, 79,2% на абсолютно сухое вещество) и сырого жира (3,2% и 11,9% соответственно). Энергетическая ценность 100 г филе в группе 3 достигла 114,0 ккал, превысив контроль на 20,6%. Содержание суммы BCAA в белке мяса увеличилось до 72,3% против 52,0% в контроле, доля серосодержащих аминокислот выросла с 12,0% до 17,0%. Индексы биологической ценности белка в группе 3 составили: аминокислотный скор — 59,5 (контроль 40,7), индекс Осера — 99,27 (контроль 69,42), PDCAAS — 56,53% (контроль 38,63%), DIAAS — 54,7% (контроль 37,4%). Полученные данные свидетельствуют о том, что рацион с добавлением 40% изолейцина, валина и лейцина обеспечивает повышение энергетической ценности продукции и улучшение аминокислотного состава белка мяса тиляпии.

1. Furuya W.M., Cruz T.P.d., Gatlin D.M. III. Amino Acid Requirements for Nile Tilapia: An Update Animals. 2023; 13(5): 900. https://doi.org/10.3390/ani13050900

2. Kandyliari A. et al. Nutrient Composition and Fatty Acid and Protein Profiles of Selected Fish By-Products. Foods. 2020; 9(2): 190. https://doi.org/10.3390/foods9020190

3. Xu C. et al. Effects of dietary leucine and valine levels on growth performance, glycolipid metabolism and immune response in Tilapia GIFT Oreochromis niloticus. Fish & Shellfish Immunology. 2022; 121: 395–403. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2022.01.028

4. Peres H. et al. Growth performance and metabolic responses of Nile tilapia fed diets with different protein to energy ratios. Aquaculture. 2021; 547: 737493. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737493

5. Araújo F.E. et al. Assessment of isoleucine requirement of fastgrowing Nile tilapia fingerlings based on growth performance, amino acid retention, and expression of muscle growth-related and mTOR genes. Aquaculture. 2021; 539: 736645. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736645

6. El-Sayed A.-F.M. et al. Dietary organic acid blend modulates hemato-immunological parameters, digestive and reproductive performances in red tilapia (Oreochromis niloticus×O. mossambicus) broodstock. Fish Physiology and Biochemistry. 2025; 51(1): 41. https://doi.org/10.1007/s10695-025-01459-1

7. Prabu E., Rajagopalsamy C.B.T., Ahilan B., Jeevagan I.J.M.A., Renuhadevi M. Tilapia — An Excellent Candidate Species for World Aquaculture: A Review. Annual Research & Review in Biology. 2019; 31(3): 1-14. https://doi.org/10.9734/arrb/2019/v31i330052

8. Pereira W.A. et al. Navigating post-pandemic tilapia farming: a systematic review and meta-analysis of probiotic as a strategy for sustainable production. Reviews in Fish Biology and Fisheries. 2025; 35(1): 95–116. https://doi.org/10.1007/s11160-024-09917-4

9. Пищенко Е.В., Морузи И.В. Мировые тенденции и перспективы выращивания карпа. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2022; (3): 164‒177. https://doi.org/10.33920/sel-09-2203-01

10. Cai J. Tilapia as an aquaculture species. Thompson K., Shoemaker C.A., Little D.C. (eds.). Tilapia: Aquaculture, Biology and Health Management. CABI. 2025; 26‒60. https://doi.org/10.1079/9781800629455.0002

11. El-Sayed A.-.F.M, Fitzsimmons K. From Africa to the world—The journey of Nile tilapia. Reviews in Aquaculture. 2023; 15(S1): 6–21. https://doi.org/10.1111/raq.12738

12. Desai A.S., Singh R.K. The effects of water temperature and ration size on growth and body composition of fry of common carp, Cyprinus carpio. Journal of Thermal Biology. 2009; 34(6): 276–280. https://doi.org/10.1016/j.jtherbio.2009.03.005

13. Schaafsma G. The protein digestibility-corrected amino acid score. Journal of Nutrition. 2000; 130(7): 1865S–1867S. https://doi.org/10.1093/jn/130.7.1865S

14. Millward D.J., Layman D.K., Tomé D., Schaafsma G. Protein quality assessment: impact of expanding understanding of protein and amino acid needs for optimal health. The American Journal of Clinical Nutrition. 2008; 87(5): 1576S–1581S. https://doi.org/10.1093/ajcn/87.5.1576S

15. Yi Lm, Lakemond C.M.M., Sagis L.M.C., Eisner-Schadler V., van Huis A., van Boekel M.A.J.S. Extraction and characterisation of protein fractions from five insect species. Food Chemistry. 2013; 141(4): 3341–3348. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.05.115

16. Schaafsma G. The Protein Digestibility-Corrected Amino Acid Score (PDCAAS)—A Concept for Describing Protein Quality in Foods and Food Ingredients: A Critical Review. Journal of AOAC International. 2005; 88(3): 988–994. https://doi.org/10.1093/jaoac/88.3.988

17. Moughan P.J., Lim W.X.J. Digestible indispensable amino acid score (DIAAS): 10 years on. Frontiers in Nutrition. 2024; 11: 1389719. https://doi.org/10.3389/fnut.2024.1389719

18. Салех Х., Хамви М.Н. Влияние разных уровней L-изолейцина в комбикормах на рост тиляпии (Oreochromis niloticus). Аграрная наука. 2024; (9): 54‒59 (на англ. яз.). https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-386-9-54-59

19. Gilani G.S. Background on international activities on protein quality assessment of foods. The British Journal of Nutrition. 2012; 108(S2): S168–S182. https://doi.org/10.1017/S0007114512002383

20. Sarwar G., McDonough F.E. Evaluation of protein digestibilitycorrected amino acid score method for assessing protein quality of foods. Journal — Association of Official Analytical Chemists. 1990; 73(3): 347–356.

21. Ciuris C., Lynch H.M., Wharton C., Johnston C.S. A Comparison of Dietary Protein Digestibility, Based on DIAAS Scoring, in Vegetarian and Non-Vegetarian Athletes. Nutrients. 2019; 11(12): 3016. https://doi.org/10.3390/nu11123016

22. Колмаков В.И., Колмакова А.А. Аминокислоты в перспективных кормах для аквакультуры рыб: обзор экспериментальных данных. Журнал Сибирского федерального университета. Биология. 2020; 13(4): 424–442. https://doi.org/10.17516/1997-1389-0332

23. Savitikadi P., Pullakhandam R., Kulkarni B., Kumar B.N., Reddy G.B., Reddy V.S. Chronic Effects of Maternal Low-Protein and Low-Quality Protein Diets on Body Composition, Glucose-Homeostasis and Metabolic Factors, Followed by Reversible Changes upon Rehabilitation in Adult Rat Offspring. Nutrients. 2021; 13(11): 4129. https://doi.org/10.3390/nu13114129

24. Шаповалов С.О., Корнилова Е.В., Шкаленко В.В., Японцев А.Э. Результаты сравнительных исследований экструдированных кормов для форели. Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. 2022; (1): 122–127. EDN LQMZWZ

25. Буряков Н.П. и др. Применение инфракрасной спектроскопии ближнего спектра для идентификации и количественного определения аминокислот в их кристаллической и солевой формах при приготовлении кормов для животных. Аграрная наука. 2023; (12): 90‒94 (на англ. яз.). https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-377-12-90-94

26. Osman A.G.M, Farrag M.M.S., Badrey A.E.A., Khedr Z.M.A., Kloas W. Water quality and health status of the monosex Nile Tilapia, Oreochromis niloticus cultured in aquaponics system (ASTAF-PRO). Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries. 2021; 25(2): ‏802.–785 26.

27. Abdel-Warith A.-W., Al-Asgah N., El-Sayed Y., El-Otaby A., Mahboob S. The effect of replacement of fish meal with Amino Acids and Optimized Protein Levels in the diet of the Nile Tilapia Oreochromis niloticus. Brazilian Journal of Biology. 2019; 79(4): 703–711. https://doi.org/10.1590/1519-6984.189413

28. Lemos C.H.d.P. et al. Responses to graded levels of zinc amino acid complex in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Veterinary Research Communications. 2024; 48(2): 1025–1036. https://doi.org/10.1007/s11259-023-10278-9

29. Gaye-Siessegger J., Focken U., Abel H., Becker K. Influence of dietary non-essential amino acid profile on growth performance and amino acid metabolism of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.). Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. 2007; 146(1): 71–77. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2006.09.025