Антиоксидантный статус организма свиней при скармливании комбикормов с мукой из личинок Hermetia Illucens

Цель исследования — оценить влияние включения муки из личинок Hermetia illucens и рыбной муки в низкопротеиновый рацион на антиоксидантный статус и маркеры окислительного стресса у свиней.

Эксперимент проведен на 24 свиньях, разделенных на 3 группы по 8 голов. Контрольная группа получала низкопротеиновый комбикорм. Животным 1-й опытной группы в рацион дополнительно включали 3% муки из личинок Hermetia illucens, 2-й опытной — 3% рыбной муки. В конце опыта в сыворотке крови определяли концентрацию общих тиолов (SH), дисульфидов (SS), малонового диальдегида (МДА) и активность супероксиддисмутазы (СОД) с использованием коммерческих иммуноферментных наборов. Рассчитывали редокс-индекс (SH/SS).

В контрольной группе на фоне ограниченного по протеину кормления выявлены признаки умеренного окислительного стресса (повышенный МДА). Включение муки из личинок H. illucens привело к наиболее выраженным позитивным изменениям: уровни МДА и СОД снизились на 33,2 и 14,4% (p < 0,05), соответственно, концентрация SS — на 15,6% (p < 0,05) при росте SH на 4,1% (p < 0,05), что повысило редокс-индекс на 23,2% (p < 0,05). В группе с рыбной мукой также отмечено достоверное, но менее выраженное улучшение показателей: снижение МДА на 14,1% и рост SH/SS на 11,8% при отсутствии изменений активности СОД. Мука из личинок черной львинки может являться не только альтернативой рыбной муке при балансировании рациона по протеину, но и проявлять антиоксидантный эффект. Выявленные отдельные эффекты снижения окислительного стресса при использовании муки из личинок черной львинки необходимо уточнить в производственных испытаниях при масштабировании опыта, что позволит рекомендовать ее в качестве функциональной кормовой добавки в дальнейшем.

1. Szczepanik K., Furgał-Dierżuk I., Gala Ł., Świątkiewicz M. Effects of Hermetia illucens Larvae Meal and Astaxanthin as Feed Additives on Health and Production Indices in Weaned Pigs. Animals. 2023; 13(1): 163. https://doi.org/10.3390/ani13010163

2. Aprianto M.A., Muhlisin, Kurniawati A., Hanim C., Ariyadi B., Anas M.A. Effect supplementation of black soldier fly larvae oil (Hermetia illucens L.) calcium salt on performance, blood biochemical profile, carcass characteristic, meat quality, and gene expression in fat metabolism broilers. Poultry Science. 2023; 102(10): 102984. https://doi.org/10.1016/j.psj.2023.102984

3. Haak L., De Smet S., Fremaut D., Van Walleghem K., Raes K. Fatty acid profile and oxidative stability of pork as influenced by duration and time of dietary linseed or fish oil supplementation. Journal of Animal Science. 2008; 86(6): 1418‒1425. https://doi.org/10.2527/jas.2007-0032

4. Burnett D.D., Legako J.F., Phelps K.J., Gonzalez J.M. Biology, strategies, and fresh meat consequences of manipulating the fatty acid composition of meat. Journal of Animal Science. 2020; 98(2): skaa033. https://doi.org/10.1093/jas/skaa033

5. Dabbou S. et al. Black soldier fly defatted meal as a dietary protein source for broiler chickens: Effects on growth performance, blood traits, gut morphology and histological features. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2018; 9: 49. https://doi.org/10.1186/s40104-018-0266-9

6. Noh S., Jin X., Jang M., Park M., Kim Y. Supplementation of black soldier fly larvae (Hermetia illucens) as a sustainable protein source on growth performance, blood profiles, immune response, and diarrhea incidence in weaning pigs. Animal Bioscience. 2026; 39(2): 250425. https://doi.org/10.5713/ab.25.0425

7. Zhu M. et al. Growth Performance and Meat Quality of Growing Pigs Fed with Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae as Alternative Protein Source. Processes. 2022; 10(8): 1498. https://doi.org/10.3390/pr10081498

8. Anuar N.S. et al. Lauric acid improves hormonal profiles, antioxidant properties, sperm quality and histomorphometric changes in testis and epididymis of streptozotocin-induced diabetic infertility rats. Toxicology and Applied Pharmacology. 2023; 470: 116558. https://doi.org/10.1016/j.taap.2023.116558

9. Spranghers T. et al. Gut antimicrobial effects and nutritional value of black soldier fly (Hermetia illucens L.) prepupae for weaned piglets. Animal Feed Science and Technology. 2018; 235: 33–42. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2017.08.012

10. Pestov A., Bratskaya S. Chitosan and Its Derivatives as Highly Efficient Polymer Ligands. Molecules. 2016; 21(3): 330. https://doi.org/10.3390/molecules21030330

11. Bharathi V.U., Thambidurai S. Phytofabrication of biocompatible chitosan-based ZnO nanocomposite aided by Cissus quadrangularis extract enriched with antimicrobial and antioxidant potential. International Journal of Biological Macromolecules. 2024; 271(2): 132677. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.132677

12. Jasińska J.M., Kamińska I., Chmiel M.J., Jamróz E. Biological potential of polysaccharides extracted from Nostoc colonies for film production — Physical and biological properties. Biotechnology Journal. 2023; 18(5): e2200455. https://doi.org/10.1002/biot.202200455

13. Franco A, et al. Antimicrobial activity of lipids extracted from Hermetia illucens reared on different substrates. Appl Microbiol Biotechnol. 2024 Jan 23;108(1):167. https://doi.org/10.1007/s00253-024-13005-9.

14. Liu Y.-Q., Song Q.-W., Mo C.-R., Yu W.-W., Hu C.-Y. Effect of neutralization treatment on properties of chitosan/bamboo leaf flavonoids/nano-metal oxide composite films and application of films in antioxidation of rapeseed oil. International Journal of Biological Macromolecules. 2023; 242(3): 124951. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2023.124951

15. Benzertiha A. et al. Insect Fat in Animal Nutrition — A Review. Annals of Animal Science. 2020; 20(4): 1217–1240. https://doi.org/10.2478/aoas-2020-0076

16. Crosbie M., Zhu C., Karrow N.A., Huber L.-A. The effects of partially replacing animal protein sources with full fat black soldier fly larvae meal (Hermetia illucens) in nursery diets on growth performance, gut morphology, and immune response of pigs. Translational Animal Science. 2021; 5(2): txab057. https://doi.org/10.1093/tas/txab057

17. Yu M., Li Z., Chen W., Rong T., Wang G., Ma X. Hermetia illucens larvae as a potential dietary protein source altered the microbiota and modulated mucosal immune status in the colon of finishing pigs. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2019; 10: 50. https://doi.org/10.1186/s40104-019-0358-1

18. Некрасов Р.В., Головин А.В., Махаев Е.А. (ред.). Нормы потребностей молочного скота и свиней в питательных веществах. Монография. М.: ФНЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста. 2018; 289. ISBN 978-5-906906-77-9 EDN XVLDML

19. Семенова А.А., Кузнецова Т.Г., Насонова В.В., Некрасов Р.В., Боголюбова Н.В., Цис Е.Ю. Использование антиоксидантов в качестве адаптогенов для свиней (Sus scrofa domesticus Erxleben, 1777) (мета-анализ). Сельскохозяйственная биология. 2020; 55(6): 1107–1125. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.6.1107rus

20. Szczepanik K, Furgał-Dierżuk I, Gala Ł, Świątkiewicz M. Effects of Hermetia illucens Larvae Meal and Astaxanthin as Feed Additives on Health and Production Indices in Weaned Pigs. Animals. 2023; 13(1): 163. https://doi.org/10.3390/ani13010163

21. Ушакова Н.А., Бродский Е.С., Коваленко А.А., Бастраков А.И., Козлова А.А., Павлов Д.С. Особенности липидной фракции личинок черной львинки Hermetia illucens. Доклады Академии наук. 2016; 468(4): 462–465. https://doi.org/10.7868/S0869565216160258

22. Chia S.Y. et al. Effect of Dietary Replacement of Fishmeal by Insect Meal on Growth Performance, Blood Profiles and Economics of Growing Pigs in Kenya. Animals. 2019; 9(10): 705. https://doi.org/10.3390/ani9100705

23. Крючков И.А., Никишов А.А. Влияние белкового концентрата из личинок черной львинки Hermetia illucens на продуктивные показатели цыплят-бройлеров. Аграрная наука. 2025; (4): 108–112. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-393-04-108-112

24. Шаабан М., Белышкина М.Е. Нетрадиционные источники белка в кормлении животных. Аграрная наука. 2025; (3): 69–75 (на англ. яз.). https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-392-03-69-75