Липидные и стероидные профили крови у коров и телок голштинской породы при разном выходе эмбрионов после полиовуляторной стимуляции

Актуальность. Изменчивость метаболического и гормонального статуса коров до и во время ранней стельности модулирует микросреду репродуктивных органов, что может влиять на жизнеспособность ооцитов и развивающихся эмбрионов при стимуляции одиночной или множественной овуляции.
Методы. Для изучения липидных и стероидных профилей крови в связи с выходом получаемых in vivo (IVD) эмбрионов были проанализированы 43 цикла стимуляции полиовуляции у 33 телок и 44 цикла у 26 коров. Взятие крови для анализа содержания гормонов и липидов проводили в 1-й день искусственного осеменения (ИО) и через 7 дней. Согласно морфологической оценке IVD эмбрионов все циклы были разделены на 3 типа: I — >5 пригодных для трансплантации морул и бластоцист (М+БЛ); II — 2–5 М+БЛ и III — 0–1 М+БЛ. 
Результаты. У коров в циклах I типа на 7-й день после ИО содержание общего холестерина в крови было в 1,2 раза ниже, чем в циклах III типа, а концентрация прогестерона превышала таковую в циклах II и III типа (в 1,8 и 5,4 раза, соответственно). У телок в циклах I типа через неделю после ИО уровень прогестерона был в 2,1–2,2 раза выше, чем в циклах II и III типа, однако концентрация холестерина не различалась и была в 2,3–2,4 раза ниже, чем у коров. Таким образом, содержание холестерина более 6,7 ммоль/л в крови коров через неделю после осеменения могло негативно сказаться на качестве IVD эмбрионов. 

1. Gui L.-S. et al. Recent advances in early pregnancy loss diagnosis in dairy cows: New approaches. Reproduction in Domestic Animals. 2024; 59(4): e14566. https://doi.org/10.1111/rda.14566

2. Pursley J.R., Santos A., Minela T. Review: Initial increase in pregnancyspecific protein B in maternal circulation after artificial insemination is a key indicator of embryonic survival in dairy cows. Animal. 2023; 17(S1): 100746. https://doi.org/10.1016/j.animal.2023.100746

3. Wiltbank M.C. et al. Pivotal periods for pregnancy loss during the first trimester of gestation in lactating dairy cows. Theriogenology. 2016; 86(1): 239–253. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.04.037

4. Лебедева И.Ю., Алейникова О.В., Ермилова А.П., Митяшова О.С. Уровни тиреоидных гормонов и прогестерона в крови голштинских коров и телок в связи с результативностью получения эмбрионов in vivo. Достижения науки и техники АПК. 2025; 39(12): 50–56. https://doi.org/10.53859/02352451_2025_39_12_50

5. Ünay E. et al. Association between metabolic parameters and embryo production in superovulated dairy cattle. Reproduction in Domestic Animals. 2024; 59(6): e14629. https://doi.org/10.1111/rda.14629

6. Denicol A.C., Siqueira L.G.B. Maternal contributions to pregnancy success: from gamete quality to uterine environment. Animal Reproduction. 2023; 20(2): e20230085. https://doi.org/10.1590/1984-3143-AR2023-0085

7. Song Y., Wang Z., Zhao C., Bai Y., Xia C., Xu C. Effect of negative energy balance on plasma metabolites, minerals, hormones, cytokines and ovarian follicular growth rate in Holstein dairy cows. Journal of Veterinary Research. 2021; 65(3): 361–368. https://doi.org/10.2478/jvetres-2021-0035

8. Bezdíček J., Nesvadbová A., Ducháček J., Sekaninová J., Stádník L., Janků M. Changes in the oxidative - biochemical status in dairy cows during the transition period affecting reproductive and health parameters. Czech Journal of Animal Science. 2024; 69(9): 345–355. https://doi.org/10.17221/128/2024-CJAS

9. Pascottini O.B., Leroy J.L.M.R., Opsomer G. Maladaptation to the transition period and consequences on fertility of dairy cows. Reproduction in Domestic Animals. 2022; 57(S4): 21–32. https://doi.org/10.1111/rda.14176

10. Sudano M.J. et al. Lipidome signatures in early bovine embryo development. Theriogenology. 2016; 86(2): 472–484. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.03.025

11. Ye Q., Zeng X., Cai S., Qiao S., Zeng X. Mechanisms of lipid metabolism in uterine receptivity and embryo development. Trends in Endocrinology & Metabolism. 2021; 32(12): 1015–1030. https://doi.org/10.1016/j.tem.2021.09.002

12. de Lima C.B., Barbosa G.Z., Ispada J., dos Santos E.C., Milazzotto M.P. Lipid availability during in vitro maturation alters oocyte lipid content and blastocyst development and metabolism. Reproduction in Domestic Animals. 2023; 58(7): 920–928. https://doi.org/10.1111/rda.14367

13. Hamdi M. et al. Gene expression and metabolic response of bovine oviduct epithelial cells to the early embryo. Reproduction. 2019; 158(1): 85–94. https://doi.org/10.1530/REP-18-0561

14. de Andrade Melo-Sterza F., Poehland R. Lipid Metabolism in Bovine Oocytes and Early Embryos under In Vivo, In Vitro, and Stress Conditions. International Journal of Molecular Sciences. 2021; 22(7): 3421. https://doi.org/10.3390/ijms22073421

15. Banliat C. et al. Stage-dependent changes in oviductal phospholipid profiles throughout the estrous cycle in cattle. Theriogenology. 2019; 135: 65–72. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.06.011

16. Radhakrishnan A., Rohatgi R., Siebold C. Cholesterol access in cellular membranes controls Hedgehog signaling. Nature Chemical Biology. 2020; 16(12): 1303–1313. https://doi.org/10.1038/s41589-020-00678-2

17. Moss J.I., Garrett T.J., Hansen P.J. Involvement of free cholesterol and highdensity lipoprotein in development and resistance of the preimplantation bovine embryo to heat shock. Journal of Animal Science. 2012; 90(11): 3762–3769. https://doi.org/10.2527/jas.2011-4717

18. Binelli M. et al. Effectors and predictors of conceptus survival in cattle: What is next?. Domestic Animal Endocrinology. 2025; 92: 106939. https://doi.org/10.1016/j.domaniend.2025.106939

19. Митяшова О.С., Лебедева И.Ю. Стероидогенная активность яичников коров в зависимости от результативности искусственного осеменения и полиморфизма гена DIO1. Аграрная наука. 2025; (11): 48–53. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-400-11-48-53

20. Lonergan P., Sánchez J.M. Symposium review: Progesterone effects on early embryo development in cattle. Journal of Dairy Science. 2020; 103(9): 8698–8707. https://doi.org/10.3168/jds.2020-18583

21. Perry G.A., Ketchum J.N., Quail L.K. Importance of preovulatory estradiol on uterine receptivity and luteal function. Animal Reproduction. 2023; 20(2): e20230061. https://doi.org/10.1590/1984-3143-AR2023-0061

22. Roche J.R. et al. Fertility and the transition dairy cow. Reproduction, Fertility and Development. 2017; 30(1): 85–100. https://doi.org/10.1071/RD17412

23. Bernard L., Leroux C., Chilliard Y. Expression and Nutritional Regulation of Lipogenic Genes in the Ruminant Lactating Mammary Gland. Bösze Z. (ed.). Bioactive Components of Milk. New York, NY: Springer. 2008; 67–108 https://doi.org/10.1007/978-0-387-74087-4_2

24. Toralová T. et al. The serum levels of triacylglycerols, nonesterified fatty acids, and beta-hydroxybutyrate as markers of reproductive capability of primiparous dairy cows. Journal of Animal Science. 2025; 103: skaf276. https://doi.org/10.1093/jas/skaf276

25. Wang S., Wang J., Jiang Y., Jiang W. Association between blood lipid level and embryo quality during in vitro fertilization. Medicine. 2020; 99(13): e19665. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000019665