Биохимический статус коров при терапии субклинического кетоза с использованием природных цеолитов и лецитина

Актуальность. Кетоз — часто наблюдаемое заболевание крупного рогатого скота, которому особенны подвержены высокопродуктивные коровы после отела, в связи с чем активно ведется поиск доступных и эффективных методов профилактики и коррекции данного состояния.

Материалы и методы. Проведено исследование биохимических показателей сыворотки крови больных субклиническим кетозом коров черно-пестрой породы при лечении по схемам, включавшим пропиленгликоль, природные цеолиты Хотынецкого месторождения и лецитин. Биохимический состав сыворотки крови и активность ферментов в ней исследовались в 4 группах новотельных коров: 1 — клинически здоровые (контроль); 2 — больные субклиническим кетозом, получавшие 250 мл пропиленгликоля 2 раза в день в течение 7 дней; 3 — больные субклиническим кетозом, получавшие 250 мл пропиленгликоля 2 раза в день в течение 7 дней и цеолиты в количестве 3% сухой массы корма в течение 21 дня; 4 — больные субклиническим кетозом, получавшие 250 мл пропиленгликоля 2 раза в день в течение 7 дней, цеолиты в количестве 3% сухой массы корма и 15 г лецитина на 100 кг живой массы в течение 21 дня.

Результаты исследований. Удалось установить, что восстановление показателей биохимического состава сыворотки крови заболевших коров до уровней клинически здоровых животных достигается на 22-й день терапии при совместном использовании пропиленгликоля, природных цеолитов и лецитина. Исключение составило содержание глюкозы, которое осталось достоверно повышено на 14,0% в сравнении с контрольным показателем. Преимущество комплексной схемы лечения перед используемой в хозяйстве основной терапией с применением только пропиленгликоля выражается в достоверном повышении на 22-й день эксперимента в сыворотке крови общего белка на 7,0%, мочевины — на 17,5%, снижении концентрации холестерина на 29,0%, общего билирубина — на 27,5%, активностей ферментов АСТ — на 31,9% и ЛДГ — на 28,5%.

1. Сафонов ВА. О метаболическом профиле высокопродуктивных коров при беременности и бесплодии. Сельскохозяйственная биология. 2008;4: 64–67.

2. Issi M, Gül Y, Başbuğ O. Evaluation of renal and hepatic functions in cattle with subclinical and clinical ketosis. Turkish journal of veterinary and animal sciences. 2016;40(1): 47–52.

3. Нежданов АГ, Рецкий МИ, Сафонов ВА, Близнецова ГН. Гормональный и антиоксидантный статус бесплодных коров. Ветеринария. 2012;10: 38–41.

4. Youssef M, El-Ashker M. Significance of insulin resistance and oxidative stress in dairy cattle with subclinical ketosis during the transition period. Tropical animal health and production. 2017;49(2): 239–244.

5. Новикова ИА, Ярован НИ, Гумаров МХ. Уровень кетоновых тел в крови высокопродуктивных коров голштинской породы в условиях промышленного комплекса. Инновационные фундаментальные и прикладные исследования в области химии сельскохозяйственному производству. Материалы IV Международной заочной научно-практической Интернет-конференции. 2011: 89–92.

6. Antanaitis R, Žilaitis V, Kučinskas A, Juozaitienė V, Leonauskaitė K. Changes in cow activity, milk yield, and milk conductivity before clinical diagnosis of ketosis, and acidosis. Veterinariya ir Zootechnika. 2015;70(92): 3–9.

7. Калаева ЕА, Калаев ВН, Черницкий АЕ, Алхамед М, Сафонов ВА Роль микроэлементного и гематологического статуса матери и плода в формировании предрасположенности к развитию бронхопневмонии у телят в неонатальный период. Проблемы биологии продуктивных животных. 2019;2: 44–53.

8. Тимошина СВ, Столбова О. Кетоз у крупного рогатого скота. Интеграция науки и практики для развития Агропромышленного комплекса. Сборник статей всероссийской научной конференции. 2017: 353–358.

9. Романов КИ. Диагностические и профилактические мероприятия при кетозе крупного рогатого скота. Перспективные технологии в современном АПК России: традиции и инновации. Рязань: Издательство Рязанского государственного агротехнологического университета; 2021;I: 136–141.

10. Gordon JL, LeBlanc S, Duffield TF. Ketosis treatment in lactating dairy cattle. Veterinary Clinics: Food Animal Practice. 2013;29(2): 433–445.

11. Учасов ДС, Буяров ВС, Ярован НИ, Червонова ИВ, Сеин ОБ. Пробиотики и пребиотики в промышленном свиноводстве и птицеводстве. Орел: Издательство Орел ГАУ. 2014. 164 с.

12. Bot F, Cossuta D, O’Mahony JA. Inter-relationships between composition, physicochemical properties and functionality of lecithin ingredients. Trends in Food Science & Technology. 2021;111: 261–270.

13. Ярован НИ, Ермакова ЛА. Мониторинг метаболического статуса организма коров – залог своевременной коррекции обменных процессов. Вестник аграрной науки. 2019;2(77): 85–89.

14. Waterman RC, Löest CA, Bryant WD, Petersen MK. Supplemental methionine and urea for gestating beef cows consuming low quality forage diets. Journal of animal science. 2007;85(3): 731–736.

15. Зеленина ОВ, Пузач ЛВ. Биохимические показатели сыворотки крови коров в летний период. Сельскохозяйственные науки и агропромышленный комплекс на рубеже веков. 2015;9: 8–13.

16. Dhami AJ, Theodore VK, Panchal MT, Hadiya KK, Lunagariya PM, Sarvaiya NP. Effect of peripartum nutritional supplementation on postpartum fertility and blood biochemical and steroid hormone profile in crossbred cows. Indian Journal of Animal Research. 2017;51(5): 821–826.

17. Нежданов АГ, Рецкий МИ, Сафонов ВА, Братченко ЭВ. Изменение пероксидного и эндокринного статуса телок в процессе становления половой и физиологической зрелости. Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2012;3: 69–70.

18. Бондаренко ЕВ. Комплексное использование крапивы и лецитина для коррекции нарушений в оксидантно-антиоксидантной системе у высокопродуктивных коров в условиях промышленного комплекса. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. 03.01.04. Курск, 2013. 24 с

19. Манджиголадзе ТЮ, Арчинова ТЮ, Романцова НА, Виноградова ЮГ. Сравнительная оценка гепатотропного действия яичного лецитина и сиропа с лецитином. Рациональное питание, пищевые добавки и биостимуляторы. 2015;1: 92–95.