Особенности роста и развития штаммов гриба — возбудителя антракноза льна (Colletotrichum lini) в условиях in vitro

Актуальность. Среди болезней, ежегодно причиняющих значительный ущерб льноводству, особенно вредоносным в последние годы является антракноз. Наиболее серьезные последствия этого заболевания наблюдаются в случае поражения всходов льна, которые могут погибнуть частично или полностью.

Методы. Исследования в условиях in vitro. Объекты исследований — штаммы возбудителя антракноза льна Colletotrichum lini Manns et Bolley 848, 850 — сильновирулентные, 855 — средневирулентный, 853 — слабовирулентный, линии и сорта льна, восприимчивые к антракнозу.

Результаты. У исследуемых штаммов возбудителя антракноза льна на 7-е сутки на питательной среде Sh-2, на 8–10-е сутки — на среде MS визуально просматривались единичные конидии, которые к 14-м суткам культивирования на среде Sh-2, к 15–16-м суткам — на среде MS образовывали желеобразную биомассу. К 40-м суткам на обеих средах мицелий приобретал плотную консистенцию, обозначились опушенные колонии различного цвета. Выявлено, что интенсивность роста гриба и наращивание биомассы не зависели от вирулентности штамма. На питательной среде MS наиболее интенсивным приростом биомассы с 14-х по 40-е сутки обладал слабовирулентный штамм 853 (25,5%), наименьшим — сильновирулентный штамм 850 (14,6%). На питательной среде Sh-2 наиболее интенсивным приростом биомассы с 14-х по 40-е сутки обладал слабовирулентный штамм 853 (57,8%), наименьшим — сильновирулентный штамм 848 (36,2%). Токсичность культуральных фильтратов не зависела от вирулентности используемых штаммов и среды культивирования штаммов, тогда как интенсивность роста и токсичность культуральных фильтратов были зависимы. Культуральный фильтрат медленнорастущего сильновирулентного 850 штамма был токсичен менее других.

1. Понажев В.П., Козьякова Н.Н. Методы ускоренного создания обновленных семян льна высокого качества в первичном семеноводстве. Аграрная наука. 2024; (9): 114-118. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-386-9-114-118

2. Кудрявцева Л.П. Грибная и бактериальная инфекции семян льна. Аграрная наука. 2022; (5): 82-86. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-359-5-82-86

3. Голуб И.А. Перспективы возделывания и переработки льна-долгунца в Республике Беларусь. Весц Нацыянальнай акадэми навукБеларусь Серыя аграрныхнавук. 2017; (3): 91-98. https://www.elibrary.ru/zeojcf

4. Rozhmina T, Bankin M., Samsonova A., Kanapin A., Samsonova M. A comprehensive dataset of flax (Linum uitatissimum L.) phenotypes. Data in Brief. 2021; 37: 107224. https://doi.org/10.10167j.dib.2021.107224

5. Трабурова Е.А., Рожмина Т.А. Результаты изучения коллекционных образцов льна-долгунца в Центральном регионе Нечерноземной зоны России. Достижения науки и техники АПК. 2022; 36(3): 79-84. https://doi.org/10.53859/02352451_2022_36_3_79

6. Кудрявцев Н.А. Испытание фунгицидных обработок семян и посевов льна. Аграрная наука. 2023; (8): 98-105. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-373-8-98-105

7. Герасимова Е.Г., Павлова Л.Н., Кудрявцева Л.П., Рожмина Т.А., Пролетова Н.В. Этапы создания нового сорта льна-долгунца с высокими прядильными свойствами. Кормопроизводство. 2023; (9): 11-15. https://www.elibrary.ru/buvajo

8. СтепинА.Д., Рысев М.Н., Рысева Т.А., Уткина С.В., Романова Н.В. Новый раннеспелый сорт льна-долгунца Стриж для условий северо-запада России. Аграрная наука ЕвроСеверо-Востока. 2023; 24(4): 572-580. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2023.24A572-580

9. Шуплецова О.Н., Огородникова С.Ю., Назарова Я.И. Эффекты неспецифической устойчивости генотипов ячменя, полученных путем клеточной селекции. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2020; 181(4): 192-199. https://doi.org/10.30901/2227-8834-2020-4-192-199

10. Kietkowska A., Adamus A. Peptide Growth Factor Phytosulfokine-a Stimulates Cell Divisions and Enhances Regeneration from B. oleracea var. capitata L. Protoplast Culture. Journal of Plant Growth Regulation. 2019; 38(3): 931-944. https://doi.org/10.1007/s00344-018-9903-y

11. Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Белов С.Н., Коротцева И.Б., Солдатенко А.В. Получение DH-растений огурца (Cucumis sativus L.) в культуре неопыленных семяпочек in vitro. Овощи России. 2019; (6): 3-9. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2019-6-3-9

12. Lardon R., Geelen D. Natural Variation in Plant Pluripotency and Regeneration. Plants. 2020; 9(10): 1261. https://doi.org/10.3390/plants9101261

13. Zaytseva YG., Poluboyarova T.V., Novikova T.I. Effects of thidiazuron on in vitro morphogenic response of Rhododendron sichotense Pojark. and Rhododendron catawbiense cv. Grandiflorum leaf explants. In vitro Cellular & Developmental Biology — Plant. 2016; 52(1): 56-63. https://doi.org/10.1007/s11627-015-9737-2

14. Lardon R., Wijnker E., Keurentjes J., Geelen D. The genetic framework of shoot regeneration in Arabidopsis comprises master regulators and conditional fine-tuning factors. Communications Biology. 2020; 3: 549. https://doi.org/10.1038/s42003-020-01274-9

15. Пролетова Н.В., Зотова В.С. Разнообразие форм льна, полученных при селекции in vitro на устойчивость к антракнозу (Colletotrichum lini). Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2024; (4): 41-49. https://www.elibrary.ru/qzhodx

16. Bidabadi S.S., Jain S.M. Cellular, Molecular, and Physiological Aspects of in vitro Plant Regeneration. Plants. 2020; 9(6): 702. https://doi.org/10.3390/plants9060702

17. Шарапова И.Э. Влияние состава питательных сред на продуктивность и биологическую активность штамма энтомопатогенного гриба Beauveria bassiana. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2021; 22(6): 91-927. https://doi.org/10.30766/2072-9081.2021.22.6.918-927