Влияние различных временных режимов проведения сеансов OPU на развитие овариальных фолликулов у тёлок сычёвской породы

С учетом влияния большого количества факторов на результативность трансвагинальной УЗИ-ассистированной аспирации овариальных фолликулов (OPU), среди которых породные и индивидуальные особенности животных, необходим подбор оптимальных режимов проведения OPU для разных пород крупного рогатого скота. Стоит отметить, что особенно актуальным является изучение параметров, влияющих на проведение технологии OPU/IVP, в рамках создания криобанков эмбрионов отечественных пород крупного рогатого скота, так как они имеют ограниченную численность. Данное исследование было проведено в ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста на тёлках сычёвской породы, признанной генофондной.
Цель работы — изучение влияния кратности проведения сеансов OPU (1 или 2 раза в неделю) на паттерн развития овариальных фолликулов во взаимосвязи с количеством и качеством извлекаемых ооцитов.
В ходе исследования было установлено, что при уменьшении интервала между сеансами OPU c 7 до 3–4 суток происходило увеличение (на 73,8%) числа аспирированных фолликулов среднего размера с одновременным уменьшением числа и доли дегенерированных ооцитов. Так, в группе, подвергающейся OPU дважды в неделю, доля пригодных ооцитов составляла 62,8% против 53,3% в группе, в которой сеансы проводили один раз в неделю. При этом доля аспирированных фолликулов от общего числа УЗИ-видимых фолликулов между группами не различалась (78,6% против 78,4%). С учетом полученных результатов оптимальным режимом проведения сеансов OPU на тёлках сычёвской породы было принято считать проведение процедуры два раза в неделю.

1. Pieterse M.C, Kappen K.A., Kruip T.A.M., Taverne M.A.M. Aspiration of bovine oocytes during transvaginal ultrasound scanning of the ovaries. Theriogenology. 1988; 30(4): 751‒762. https://doi.org/10.1016/0093-691X(88)90310-X

2. Чинаров Р.Ю. Развитие технологии прижизненного получения ооцитов у коров: современное состояние и направления исследований (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2024; 59(2): 194‒220. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2024.2.194rus

3. Ferré L.B. et al. Transvaginal ultrasound-guided oocyte retrieval in cattle: State-of-the-art and its impact on the in vitro fertilization embryo production outcome. Reproduction in Domestic Animals. 2023; 58(3): 363‒378. https://doi.org/https://doi.org/10.1111/rda.14303

4. Белокурова С.С., Чинаров Р.Ю. Сравнительная оценка получения эмбрионов in vitro и in vivo. Производство и переработка сельскохозяйственной продукции. Материалы X Международной научно-практической конференции. Воронеж: Воронежский государственный аграрный университет. 2024; 31‒35. https://elibrary.ru/gqsppt

5. Ealy A.D., Wooldridge L.K., McCoski S.R. Board invited review: Post-transfer consequences of in vitro-produced embryos in cattle. Journal of Animal Science. 2019; 97(6): 2555‒2568. https://doi.org/10.1093/jas/skz116

6. Sirard M.-A. 40 years of bovine IVF in the new genomic selection context. Reproduction. 2018; 156(1): R1‒R7. https://doi.org/10.1530/REP-18-0008

7. Watanabe Y.F. et al. Number of oocytes retrieved per donor during OPU and its relationship with in vitro embryo production and field fertility following embryo transfer. Animal Reproduction. 2017; 14(3): 635–644. https://doi.org/10.21451/1984-3143-AR1008

8. Viana J.H.M. 2023 Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals. Embryo Technology Newsletter. 2024; 42(4): 33–46.

9. Baruselli P.S. et al. Factors that interfere with oocyte quality for in vitro production of cattle embryos: effects of different developmental & reproductive stages. Animal Reproduction. 2016; 31(3): 264–272. https://doi.org/10.21451/1984-3143-AR861

10. Garcia S.M. et al. Synchronization of stage of follicle development before OPU improves embryo production in cows with large antral follicle counts. Animal Reproduction Science. 2020; 221: 106601. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2020.106601

11. Presicce G.A. et al. Efficacy of repeated ovum pick-up in Podolic cattle for preservation strategies: a pilot study. Italian Journal of Animal Science. 2020; 19(1): 31‒40. https://doi.org/10.1080/1828051X.2019.1684213

12. Sakaguchi K., Yanagawa Y., Yoshioka K., Suda T., Katagiri S., Nagano M. Relationships between the antral follicle count, steroidogenesis, and secretion of follicle-stimulating hormone and anti-Müllerian hormone during follicular growth in cattle. Reproductive biology and endocrinology. 2019; 17: 88. https://doi.org/10.1186/s12958-019-0534-3

13. Sartori R., Gimenes L.U., Monteiro P.L.J. Jr, Melo L.F., Baruselli P.S., Bastos M.R. Metabolic and endocrine differences between Bos taurus and Bos indicus females that impact the interaction of nutrition with reproduction. Theriogenology. 2016; 86(1): 32‒40. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.04.016

14. Benedetti C. et al. Effect of follicle characteristics on bovine in vitro embryo development. Reproduction, Fertility, and Development. 2021; 34(2): 307‒308. https://doi.org/10.1071/RDv34n2Ab139

15. Bó G.A., Cedeño A., Mapletoft R.J. Strategies to increment in vivo and in vitro embryo production and transfer in cattle. Animal Reproduction. 2019; 16(3): 411‒422. https://doi.org/10.21451/1984-3143-AR2019-0042

16. Ongaratto F.L., Cedeño A.V., Rodriguez-Villamil P., Tríbulo A., Bó G.A. Effect of FSH treatment on cumulus oocyte complex recovery by ovum pick up and in vitro embryo production in beef donor cows. Animal Reproduction Science. 2020; 214: 106274. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2020.106274

17. Seneda M.M., Zangirolamo A.F., Bergamo L.Z., Morotti F. Follicular wave synchronization prior to ovum pick-up. Theriogenology. 2020; 150: 180‒185. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2020.01.024

18. Ferré L.B., Kjelland M.E., Strøbech L.B., Hyttel P., Mermillod P., Ross P.J. Review: Recent advances in bovine in vitro embryo production: reproductive biotechnology history and methods. Animal. 2020; 14(5): 991‒1004. https://doi.org/10.1017/S1751731119002775

19. Багиров В.А., Зиновьева Н.А. Современное состояние и миро вой опыт сохранения генетических ресурсов сельскохозяйственных животных. Успехи наук о животных. 2024; (1): 5‒24. https://elibrary.ru/hfwueh

20. Белокурова С.С., Чинаров Р.Ю., Сингина Г.Н. Оценка эффективности различных временных режимов проведения OPU у тёлок сычёвской породы. Исследования молодых ученых в реализации приоритетов научно-технологического развития в области животноводства. Сборник тезисов докладов молодежной научной конференции. Подольск: Федеральный исследовательский центр животноводства — ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста. 2025; 34‒35. https://elibrary.ru/wyzdzc

21. Сингина Г.Н., Чинаров Р.Ю., Шедова Е.Н. Влияние количества повторяющихся процедур OPU на эффективность получения in vitro эмбрионов у ярославской породы крупного рогатого скота. Достижения науки и техники АПК. 2023; 37(11): 59‒64. https://elibrary.ru/iowixw

22. Saleem M., Yousuf M.R., Ghafoor A., Riaz A. Effect of three schemes of ovum pick-up on the follicular dynamics, gene expression, and in-vitro developmental competence of oocytes in Sahiwal cattle. Reproduction in Domestic Animals. 2022; 57(10): 1230‒1243. https://doi.org/10.1111/rda.14198

23. Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Сингина Г.Н., Тарадайник Н.П. Результативность получения ооцитов коров при различных временных режимах трансвагинальной пункции фолликулов. Достижения науки и техники АПК. 2020; 34(2): 57‒60. https://elibrary.ru/koyvtv