Дифференциальные цитофизиологические маркеры эритроидных прекурсоров, зрелых эритроидных клеток и теней эритроидных клеток вследствие эриптоза в организме животных

Актуальность. Представлены дифференциальные диагностические маркеры интактных полихроматофильных эритробластов, зрелых эритроцитов и теней эритробластов, теней эритроцитов в нормальной картине периферической крови на модельном организме животных — птиц (Aves).

Методы. Морфофизиологическую характеристику эритробластов, эритроцитов и теней эритробластов, теней эритроцитов осуществляли по мазкам крови птиц Gallus gallus L. (n = 40, окрашенных по Паппенгейму) от четырех возрастных групп (Postembryonalis — Р1, Р7, Р23 и Р42: 1, 7, 23 и 42 дня постэмбрионального онтогенеза) промышленного стада. Идентификацию и цитофизиологический анализ теней профиля ядра, цитоплазмы, клетки и неидентифицированных теней клеток выполняли по калиброванным микрофотографиям высокого разрешения (n = 158).

Результаты. В организме модельных животных — птиц — морфологические изменения эритробластов периферического кровотока в результате эриптоза имеют цитофизиологический характер, соответствующий статусу клинически здорового животного. Апоптотические изменения бластных и клеточных форм эритроидного звена в периферическом кровотоке птиц группируются в такие ядерно-цитоплазматические образования различной степени выраженности, как цитолиз, фрагментация цитоплазмы, кариопикноз, кариорексис, кариолизис, фрагментация хроматина, хроматинолиз, вакуолизация цитоплазмы. Итогом изучения явлений эриптоза в периферическом звене кровотока у птиц явились разработка и формулирование дифференциальных критериев — маркеров теней эритроидных клеток с клиническим, общебиологическим и дидактическим значением.

1. Bhattacherjee A. Avian Erythrocytes and Agranulocytes — a Review. Science Reviews — Biology. 2023; 2(2): 21–29. https://doi.org/10.57098/SciRevs.Biology.2.2.2

2. Липунова Е.А., Скоркина М.Ю. Система красной крови: сравнительная физиология. Монография. Белгород: Изд-во БелГУ. 2004; 216.

3. Колесник Е.А., Дерхо М.А. Характеристика проблематики морфофизиологии клеток крови неонатального онтогенеза кур. Сообщение II. Характеристика дифференциальных морфофизиологических маркеров форменных элементов крови птиц. АПК России. 2019; 26(4): 644–652. https://doi.org/10.5281/zenodo.4385940

4. Колесник Е.А., Дерхо М.А., Ребезов М.Б. Функциональные морфоденситометрические параметры хроматина ядра и цитоплазмы эритробластов и эритроцитов птиц в постэмбриональном онтогенезе. Аграрный вестник Урала. 2024; 24(1): 59–85. https://doi.org/10.32417/1997-4868-2024-24-01-59-85

5. Колесник Е.А., Дерхо М.А., Ребезов М.Б. Формы дегенерации клеток крови, их физиологическое и клиническое значение, механизмы образования, тени клеток в мазках крови птиц. Аграрная наука. 2024; 378(1): 65–74. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-378-1-65-74

6. Цыганков Е.М., Менькова А.А., Алейников И.М. Профилактика стрессов в мясном птицеводстве. Брянск: Брянский государственный аграрный университет. 2025; 173.

7. Колесник Е.А. Термин, понятие об адаптационном гомеостазисе, его гипотеза, теория и практика. Системный анализ в медицине (САМ 2022). Материалы XVI Международной научной конференции. Благовещенск: Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания. 2022; 13–16. https://doi.org/10.5281/zenodo.7676415

8. Hammouche D., Mouss A.K., Meziane R., Ikhlef H. Study of the Physiological Responses of Two Strains of Laying Hens under Thermal Challenge. Biology and Life Sciences Forum. 2024; 36(1): 3. https://doi.org/10.3390/blsf2024036003

9. Hammouche D., Mouss A.K., Meziane R. Impact of climate change on thermoregulation, blood attributes and production performance in laying hens. Journal of Livestock Science and Technologies. 2025; 13(1): 39–46. https://doi.org/10.22103/jlst.2024.23828.1555

10. Xue G. et al. Intermittent mild cold stimulation improves the immunity and cold resistance of spleens in broilers. Poultry Science. 2021; 100(12): 101492. https://doi.org/10.1016/j.psj.2021.101492

11. Yusifova A., Aslanova S., Asadova B., Mammadova I., Safarova A. Effect of micronutrients on the peculiarities of growth and development of maize plants. International Journal of Biosciences. 2025; 26(6): 55–60. https://dx.doi.org/10.12692/ijb/26.6.55-60

12. Gunawan R.A., Sunarno S., Djaelani M.A., Kasiyati K. Leukocyte Profile of Broiler Chickens (Gallus domesticus) After Consumption of Feed With Spirulina (Spirulina sp.) Feed Additives and Liquid Nano Chitosan. AL-Kauniyah: Jurnal Biologi. 2025; 18(2): 303–317. https://doi.org/10.15408/kauniyah.v18i2.40513

13. Lestari D. et al. Disease resistance traits of IPB-D2 chickens: Characterization of IgY concentrations, Newcastle disease antibody titers, and leukocyte profiles. Veterinary World. 2025; 18(1): 172–177. https://doi.org/10.14202/vetworld.2025.172-177

14. Kolokolnikova T., Dymkov A., Borisenko S., Kavtarashvili A. Method of Increasing Bird Adaptation in the Early Stages of Embryogenesis. Advances in Social Science, Education and Humanities Research. The Fifth Technological Order: Prospects for the Development and Modernization of the Russian Agro-Industrial Sector (TFTS 2019). 2020; 393: 399–402. https://doi.org/10.2991/assehr.k.200113.211

15. Diwan A., Koesters A.G., Capella D., Geiger H., Kalfa T.A., Dorn II G.W. Targeting erythroblast-specific apoptosis in experimental anemia. Apoptosis. 2008; 13(8): 1022–1030. https://doi.org/10.1007/s10495-008-0236-3

16. Liu S., Tsyplenkova S., Fillebeen C., Pantopoulos K. Hypoferremic Response to Chronic Inflammation Is Controlled via the Hemojuvelin / Hepcidin / Ferroportin Axis and Does Not Involve Hepcidin-Independent Regulation of Fpn mRNA. American Journal of Hematology. 2025; 100 (8): 1323–1333. https://doi.org/10.1002/ajh.27710

17. Hristoskova S., Holzgreve W., Hahn S., Rusterholz C. Human mature erythroblasts are resistant to apoptosis. Experimental Cell Research. 2007; 313(5): 1024–1032. https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2006.12.018

18. Чумакова С.П., Уразова О.И., Зима А.П., Новицкий В.В. Особенности физиологии эритроцитов. Гемолиз и эриптоз. Гематология и трансфузиология. 2018; 63(4): 343–351. https://doi.org/10.25837/HAT.2019.51.80.003

19. Dehghan S., Kheshtchin N., Hassannezhad Sh., Soleimani M. Cell death classification: A new insight based on molecular mechanisms. Experimental Cell Research. 2023; 433(2): 113860. https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2023.113860

20. Никитина А.Р., Зиякаева К.Р., Каюмова А.Ф., Шамратова В.Г. Оптические и морфометрические характеристики нейтрофилов крови крыс в условиях воздействия медно-цинковой колчеданной руды. Журнал медико-биологических исследований. 2025; 13(2): 222–232. https://doi.org/10.37482/2687-1491-Z244

21. Череменина Н.А., Веремеева С.А., Краснолобова Е.П. Биохимические показатели крови индеек мясного кросса в период роста. Вестник КрасГАУ. 2025; 218(5): 155–168. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2025-5-155-168

22. Tang X. et al. Cecal microbiota transplantation enhances calcium retention through modulation of gut microbiota and intestinal calcium transporter gene expression in chicks. Poultry Science. 2025; 104(9): 105437. https://doi.org/10.1016/j.psj.2025.105437

23. Vokhidova N.R., Ergashev K.X., Ibragimov D., Rashidova S.Sh. Chitosan hydroxyapatite: physic-chemical properties and its effect on the growth and development of broiler chickens. Journal of World’s Poultry Research. 2023; 13(2): 233–243. https://dx.doi.org/10.36380/jwpr.2023.26

24. Seewald A., Zhong J., Siri M., Fratzl P., Raguin E. Threedimensional imaging of vasculature and forming quail femur using cryocorrelative light and electron microscopy (cryo-CLEM). Faraday Discussions. 2025; 261: 430–445. https://doi.org/10.1039/d5fd00022j

25. Lang F., Qadri S.M. Mechanisms and significance of eryptosis, the suicidal death of erythrocytes. Blood Purification. 2012; 33(1-3): 125–130. https://doi.org/10.1159/000334163

26. Tkachenko A. Apoptosis and eryptosis: similarities and differences. Apoptosis. 2024; 29(3-4): 482–502. https://doi.org/10.1007/s10495-023-01915-4

27. Tkachenko A., Havranek O. Erythronecroptosis: an overview of necroptosis or programmed necrosis in red blood cells. Molecular and Cellular Biochemistry. 2024; 479(12): 3273–3291. https://doi.org/10.1007/s11010-024-04948-8

28. Tkachenko A. Is eryptosis druggable? Annals of Hematology. 2024; 103(5): 1791–1792. https://doi.org/10.1007/s00277-024-05713-z

29. Каменская Т.В., Гончарова Н.В., Клименкова О.В., Игнацкая А.Ю., Карпенко Ф.Н. Показатели эриптоза донорских эритроцитов на разных сроках хранения и при различных методах заготовки. Гематология. Трансфузиология. Восточная Европа. 2025; 11(1): 27–34. https://doi.org/10.34883/PI.2025.11.1.011

30. Ismailov E.Sh. Infrared spectra of erythrocyte shadows in the region of the amide I and amide II bands following microwave irradiation. Biofizika. 1976; 21(5): 940–942. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1022261/

31. Pyrshev K.A., Klymchenko A.S., Csúcs G., Demchenko A.P. Apoptosis and eryptosis: Striking differences on biomembrane level. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) — Biomembranes. 2018; 1860(6): 1362–1371. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2018.03.019

32. Боронихина Т.В., Ломановская Т.А., Яцковский А.Н. Плазмолемма эритроцитов и ее изменения в течение жизни клеток. Журнал анатомии и гистопатологии. 2021; 10(2): 62–72. https://doi.org/10.18499/2225-7357-2021-10-2-62-72

33. Астахов А.А., Казарцев В.В., Кучкин К.В., Barg J. Ионоселективные электроды для измерения калия в эритроцитах: модель клинической интерпретации результатов (пилотное исследование). Современные технологии в медицине. 2022; 14(3): 42–49. https://doi.org/10.17691/stm2022.14.3.05

34. Ишутина Н.А., Андриевская И.А., Дорофиенко Н.Н., Кутепова О.Л., Медведева С.В. Молекулярные эффекты эритропоэтина на липидный состав мембраны эритроцитов крови пуповины новорожденных при цитомегаловирусной инфекции в период беременности. Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2019; 71: 88–93. https://doi.org/10.12737/article_5c89a90227a213.58230200

35. Tong X. et al. Targeting cell death pathways for cancer therapy: recent developments in necroptosis, pyroptosis, ferroptosis, and cuproptosis research. Journal of Hematology and Oncology. 2022; 15(1): 1–32. https://doi.org/10.1186/s13045-022-01392-3

36. Niu C., Zhang J. Immunoregulation role of the erythroid cells. Frontiers in Immunology. 2024; 15: 1466669. https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1466669

37. Шкробова Н.В., Махонько М.Н., Шарипов Д.Г., Мустафаев П.В. оглы, Шелехова Т.В. Токсическое влияние свинца на работников, подвергшихся его воздействию. Тенденции развития науки и образования. 2024; 105-9: 70–75. https://doi.org/10.18411/trnio-01-2024-442

38. Perrone P. et al. Protective effects of olive oil antioxidant phenols on mercury-induced phosphatidylserine externalization in erythrocyte membrane: Insights into scramblase and flippase activity. Free Radical Biology & Medicine. 2025; 227: 42–51. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2024.11.047

39. Alajeyan I.A., Alsughayyir J., Alfhili M.A. Zeatin Elicits Premature Erythrocyte Senescence Through Calcium and Oxidative Stress Mediated by the NOS/PKC/CK1α Signaling Axis. Dose-Response. 2025; 23(1): 15593258251314825. https://doi.org/10.1177/15593258251314825

40. Ma J. et al. Downregulation of intrinsic apoptosis pathway in erythroblasts contributes to excessive erythrocytosis of chronic mountain sickness. Blood Cells, Molecules and Diseases. 2019; 76: 25–31. https://doi.org/10.1016/j.bcmd.2019.01.002