Оценка антагонистической активности и антибиотикочувствительности штаммов Bacillus mojavensis, выделенных из кишечника цыплят-бройлеров
https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-409-08-43-52
Аннотация
Актуальность. Проблема антибиотикорезистентности в ветеринарной медицине обуславливает необходимость разработки безопасных терапевтических альтернатив, среди которых особое место занимают пробиотические препараты на основе микроорганизмов рода Bacillus. Цель настоящей работы — оценка антагонистической активности и профиля чувствительности к антибактериальным препаратам 15 штаммов Bacillus mojavensis, выделенных из кишечника цыплят-бройлеров, с последующим отбором перспективных штаммов-кандидатов для создания пробиотической добавки.
Методы. Антагонистическую активность определяли методом перпендикулярных штрихов в отношении 15 тест-культур, включая грамположительные и грамотрицательные бактерии, а также микромицеты и дрожжи. Чувствительность к 17 антибиотикам оценивали дискодиффузионным методом с применением иерархического кластерного анализа и ранжирования изолятов по интегральным показателям.
Результаты. Установлена выраженная межштаммовая вариабельность как по антибиотикочувствительности, так и по антагонистической активности. Три штамма (№ 7, № 10 и № 12) продемонстрировали максимальную суммарную чувствительность к антибактериальным препаратам и были отнесены к группе высокочувствительных. Штамм № 10 показал наибольшую интегральную антагонистическую активность (сумма зон задержки роста — 402,7 мм), статистически значимо превосходя остальные изоляты, а также выраженный фунгистатический эффект в отношении Aspergillus niger и других плесневых грибов. У штаммов № 8 и № 15 выявлен фенотип множественной лекарственной устойчивости, что послужило основанием для их исключения из числа кандидатов. На основании комплексного рангового анализа штамм № 10 рекомендован в качестве основного компонента для разработки пробиотического препарата широкого спектра действия. Предложенный подход позволяет объективно дифференцировать штаммы по критериям биобезопасности и функциональной эффективности.
Об авторе
М. В. КалашниковРоссия
Максим Вячеславович Калашников, аспирант; младший научный сотрудник
Университетский проспект, 26, Волгоград, 400002
ул. Тимирязевская, 42, корпус Б, Москва, 127434
Список литературы
1. Филимонов Д.Н., Енгашев С.В., Лесниченко И.Ю., Кисарова А.А. Борьба с лекарственной резистентностью на птицеводческих предприятиях России: видовой состав патогенных микроорганизмов и мониторинг эффективности лекарственных препаратов. Птицеводство. 2024; (9): 78‒81. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2024-73-9-78-81
2. Muaz K., Riaz M., Akhtar S., Park S., Ismail A. Antibiotic Residues in Chicken Meat: Global Prevalence, Threats, and Decontamination Strategies: A Review. Journal of Food Protection. 2018; 81(4): 619‒627. https://doi.org/10.4315/0362-028X.JFP-17-086
3. Vieco-Saiz N. et al. Unraveling the benefits of Bacillus subtilis DSM 29784 poultry probiotic through its secreted metabolites: an in vitro approach. Microbiology Spectrum. 2024; 12(11): e00177-24. https://doi.org/10.1128/spectrum.00177-24
4. Тюрина Д.Г. и др. Развитие антибиотикорезистентности микроорганизмов у цыплят-бройлеров под влиянием ветеринарных антибиотиков и пробиотика. Аграрная наука. 2024; (3): 85‒91. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2024-380-3-85-91
5. Fei L. et al. A probiotic Brevibacillus laterosporus promotes chicken growth performance immunity and gut health. Scientific Reports. 2026; 16: 21. https://doi.org/10.1038/s41598-025-29309-3
6. Ефременкова О.В. и др. Антибиотическая активность пробиотического штамма Bacillus subtilis 534 в отношении клинических изолятов Acinetobacter baumannii. Антибиотики и Химиотерапия. 2016; 61(9‒10): 3‒7. EDN: XUZJXT
7. Орлова Т.Н., Иркитова А.Н., Гребенщикова А.В., Дудник Д.Е. Изучение антибиотикочувствительности нового ризосферного штамма Bacillus pumilus B-13250 для возможности использования его в составе пробиотических препаратов для животноводства. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2020; (1): 111–115. EDN: BWOOJD
8. Helmy Y.A., Closs G., Jung K., Kathayat D., Vlasova A., Rajashekara G. Effect of Probiotic E. coli Nissle 1917 Supplementation on the Growth Performance, Immune Responses, Intestinal Morphology, and Gut Microbes of Campylobacter jejuni Infected Chickens. Infection and Immunity. 2022; 90(10): e00337-22. https://doi.org/10.1128/iai.00337-22
9. Oladokun S., Koehler A., MacIsaac J., Ibeagha-Awemu E.M., Adewole D.I. Bacillus subtilis delivery route: effect on growth performance, intestinal morphology, cecal short-chain fatty acid concentration, and cecal microbiota in broiler chickens. Poultry Science. 2021; 100(3): 100809. https://doi.org/10.1016/j.psj.2020.10.063
10. Payne J., Bellmer D., Jadeja R., Muriana P. The Potential of Bacillus Species as Probiotics in the Food Industry: A Review. Foods. 2024; 13(15): 2444. https://doi.org/10.3390/foods13152444
11. Alhassani A.N.A. et al. A Review on Aspergillosis in Turkey: As a Main Fungal Disease in Poultry. Veterinary Medicine and Science. 2025; 11(6): e70605. https://doi.org/10.1002/vms3.70605
12. Belalmi N.E.H., Sid N., Sedrati T., Ouhida S., Bennoune O., Özmen Ö. Multisystemic aspergillosis with unusual vertebral osteomyelitis in a turkey flock in Bordj Bou Arreridj Province, Algeria. Open Veterinary Journal. 2025; 15(5): 2009‒2015. https://doi.org/10.5455/OVJ.2025.v15.i5.16
13. Almremdhy H.A.A.-E., Neamha G.A.K., Al-Hilli Z.B., Awadh R.J. Pathological, hematological, and biochemical alteration in broiler chickens infected with mycotoxin in Babylon province. Open Veterinary Journal. 2024; 14(11): 2848‒2859. https://doi.org/10.5455/OVJ.2024.v14.i11.13
14. Khaziakhmetov F. et al. Valuable Effect of Using Probiotics in Poultry Farming. Annual Research & Review in Biology. 2018; 18(3): 1–6. https://doi.org/10.9734/arrb/2018/40070
15. Sharipova A. et al. The effects of a probiotic dietary supplementation on the livability and weight gain of broilers. Annual Research and Review in Biology. 2017; 21(5): 1–7. https://doi.org/10.9734/ARRB/2017/37344
16. Погодаев В.А., Ребезов М.Б. Продуктивность и динамика метаболических процессов в организме молодняка индеек, при использовании в рационе эубиотиков на основе бифидобактерий штамма Bifidobacterium bifidum. Все о мясе. 2023; (3): 36–47. https://doi.org/10.21323/2071-2499-2023-3-36-47
17. Тарасова Е.Ю., Матросова Л.Е. Изучение биохимических показателей сыворотки крови кур-несушек при сочетанном микотоксикозе на фоне применения многокомпонентного средства «Галлуасорб». Вестник КрасГАУ. 2024; (10): 140‒146. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2024-10-140-146
18. Dastjerdi Z.K., Ghazi S. Microencapsulation of Bacillus Mojavensis as potent probiotic strain isolated from soil of Iran and determining characterization. The Microbe. 2025; 8: 100425. https://doi.org/10.1016/j.microb.2025.100425
19. Etyemez Büyükdeveci M., Cengizler İ., Balcázar J.L., Demirkale İ. Effects of two host-associated probiotics Bacillus mojavensis B191 and Bacillus subtilis MRS11 on growth performance, intestinal morphology, expression of immunerelated genes and disease resistance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) against Streptococcus iniae. Developmental & Comparative Immunology. 2023; 138: 104553. https://doi.org/10.1016/j.dci.2022.104553
20. Martínez-Ortiz V.M. et al. Bacillus mojavensis isolated from aguamiel and its potential as a probiotic bacterium. Electronic Journal of Biotechnology. 2024; 67: 42‒49. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2023.11.002
21. Trujillo-López M.A. et al. Bacillus mojavensis postbiotics: transcriptomic and anticancer effects in colon cancer cells. AMB Express. 2026; 16: 39. https://doi.org/10.1186/s13568-026-02018-4
22. Diabankana R.G.C., Afordoanyi D.M., Safin R.I., Nizamov R.M., Karimova L.Z., Validov S.Z. Antifungal Properties, Abiotic Stress Resistance, and Biocontrol Ability of Bacillus mojavensis PS17. Current Microbiology. 2021; 78(8): 3124‒3132. https://doi.org/10.1007/s00284-021-02578-7
23. Ze M. et al. Beneficial effects of Bacillus mojavensis strain MTC-8 on plant growth, immunity and disease resistance against Magnaporthe oryzae. Frontiers in Microbiology. 2024; 15: 1422476. https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1422476
24. Wang B., Lei X., Chen J., Li W., Long Y., Wang W. Antifungal Activities of Bacillus mojavensis BQ-33 towards the Kiwifruit Black Spot Disease Caused by the Fungal Pathogen Didymella glomerata. Microorganisms. 2022; 10(10): 2085. https://doi.org/10.3390/microorganisms10102085
25. Li Y., Tang X., Chen L., Xu X., Li J. Characterization of a Nattokinase from the Newly Isolated Bile Salt-Resistant Bacillus mojavensis LY-06. Foods. 2022; 11(16): 2403. https://doi.org/10.3390/foods11162403
26. Saxena A.K., Kumar M., Chakdar H., Anuroopa N., Bagyaraj D.J. Bacillus species in soil as a natural resource for plant health and nutrition. Journal of Applied Microbiology. 2020; 128(6): 1583‒1594. https://doi.org/10.1111/jam.14506
27. Василевич Ф.И., Бачинская В.М., Шарапова Н.Р., Гурьева В.И. Эффективность пробиотических кормовых добавок для профилактики кишечных инфекций. АПК России. 2024; 31(4): 569‒579. https://doi.org/10.55934/2587-8824-2024-31-4-569-579
28. Rebezov M. et al. Improving meat quality and safety: innovative strategies. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences. 2024; 18: 505–522. https://doi.org/10.5219/1972
29. Rebezov M. et al. Novel Techniques for Microbiological Safety in Meat and Fish Industries. Applied Sciences. 2021; 12(1): 319. https://doi.org/10.3390/app12010319
30. Камалетдинова А.В., Калашников В.А., Бодрякова Н.П., Калашников М.В. Разработка и валидация метода количественного определения Salmonella spp. в мясе птицы с использованием комбинации метода наиболее вероятного числа и полимеразной цепной реакции. Аграрная наука. 2026; (3): 34‒41. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-404-03-34-41
31. Чеботарь И.В., Поликарпова С.В., Бочарова Ю.А., Маянский Н.А. Использование времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-TОF MS) для идентификации бактериальных и грибковых возбудителей III–IV групп патогенности. Лабораторная служба. 2018; 7(2): 78–86. https://doi.org/10.17116/labs20187278-86
32. Гурьева В.И., Бачинская В.М., Шарапова Н.Р. Определение чувствительности пробиотических штаммов бактерий к антибактериальным препаратам диско-диффузионным методом. Вестник Марийского государственного университета. Серия «Сельскохозяйственные науки. Экономические науки». 2024; 10(1): 9‒16. https://doi.org/10.30914/2411-9687-2024-10-1-9-16
33. Рузина А.В. Бактериологические исследования в птицеводстве для подбора эффективных антимикробных препаратов. Ветеринария. 2025; (9): 27‒32. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2025.28.9.27-32
34. Ohki R., Tateno K., Takizawa T., Aiso T., Murata M. Transcriptional termination control of a novel ABC transporter gene involved in antibiotic resistance in Bacillus subtilis. Journal of Bacteriology. 2005; 187(17): 5946‒5954. https://doi.org/10.1128/JB.187.17.5946-5954.2005
35. Jamaluddin I.P. et al. Detection of Pseudomonas aeruginosa pus wound isolate using a polymerase chain reaction targeting 16S rRNA and gyrB genes: A case from Indonesia. Narra J. 2024; 4(2): e774. https://doi.org/10.52225/narra.v4i2.774
Рецензия
Для цитирования:
Калашников М.В. Оценка антагонистической активности и антибиотикочувствительности штаммов Bacillus mojavensis, выделенных из кишечника цыплят-бройлеров. Аграрная наука. 2026;1(8):43-52. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-409-08-43-52
For citation:
Kalashnikov M.V. Evaluation of antagonistic activity and antibiotic susceptibility of Bacillus mojavensis strains isolated from the intestines of broiler chickens. Agrarian science. 2026;1(8):43-52. (In Russ.) https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-409-08-43-52
JATS XML

































