Здоровье кишечника цыплят-бройлеров при использовании в кормлении фитогенной композиции
https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-409-08-95-104
Аннотация
Актуальность. Сокращение использования кормовых антибиотиков в птицеводстве требует разработки и изучения альтернативных кормовых добавок, положительно влияющих на здоровье кишечника. К числу таких добавок относят фитобиотики, проявляющие противовоспалительные, антиоксидантные, антибактериальные и иммуномодулирующие свойства. С целью выявления влияния разных вариантов фитогенной композиции на здоровье кишечника был проведен опыт на цыплятах-бройлерах.
Методы. Было сформировано три группы, двум из которых в составе рациона скармливали два варианта фитогенной композиции с разным соотношением экстрактов цикория (40/35%), зверобоя (10/5%), левзеи сафлоровидной (35/40%) и тимьяна ползучего (15/20%). Об их влиянии на состояние здоровья кишечника судили по морфологическим характеристикам тканей слепой кишки, относительной экспрессии в них генов, связанных с резистентностью, по уровню условно-патогенной микробиоты.
Результаты. Результаты исследования свидетельствовали о снижении экспрессии генов, связанных с воспалительным процессом и сопротивлением патогенам, в тканях кишечника цыплят опытных групп: активность AvBD9 сокращалась в 7,0 раз (p ≤ 0,05), AvBD10 — в 12,7…140,0 раз (p ≤ 0,01), IL8L2 – в 154,0 раза (p ≤ 0,01), IRF7 — в 47,0 раз (p ≤ 0,05). Результаты гистологических исследований указывали на сокращение в опытных группах высоты эпителия на 24,7…49,1% (p ≤ 0,001) и толщины подслизистой основы в 2,8–2,9 раза (p ≤ 0,001), повышение глубины крипт на 80,5% (p ≤ 0,001), толщины мышечной пластинки на 6,5% (p ≤ 0,05), толщины мышечной оболочки — на 14,8% (p ≤ 0,001), а также на отсутствие признаков деградации и угнетения эпителиальных клеток в опыте в отличие от контроля. Численность Escherichia coli, для которой были характерны такие факторы вирулентности, как ybtA, iroE, fliA epaQ, ycbV, ykgK/ecpR, fliP, espL4, cheB, stgC и другие, в микробиоме цыплят контроля составила 11,98%, в то время как во 2-й опытной группе — 3,74%, в 3-й группе — 0,71% (p ≤ 0,05). Это позволяет рассматривать разработанные варианты фитогенной композиции в качестве кормовых биопрепаратов, направленных на улучшение здоровья кишечника цыплят-бройлеров.
Ключевые слова
Об авторах
А. Ю. ЗагаринРоссия
Артем Юрьевич Загарин, ассистент, младший научный сотрудник
ул. Тимирязевская, 49, Москва, 127434
М. И. Селионова
Россия
Марина Ивановна Селионова, доктор биологических наук, профессор РАН, ведущий научный сотрудник
ул. Тимирязевская, 49, Москва, 127434
Н. П. Беляева
Россия
Нина Петровна Беляева, кандидат биологических наук, доцент, научный сотрудник
ул. Тимирязевская, 49, Москва, 127434
Ю. А. Лысенко
Россия
Юрий Андреевич Лысенко, доктор биологических наук, доцент, профессор, ведущий научный сотрудник
ул. Тимирязевская, 49, Москва, 127434
Е. И. Куликов
Россия
Егор Игоревич Куликов, заведующий лабораторией
ул. Птицеградская, 10, Сергиев Посад, 141311
А. В. Жевнеров
Россия
Алексей Валерьевич Жевнеров, кандидат химических наук, доцент, директор Учебно-научный центра коллективного пользования
ул. Тимирязевская, 49, Москва, 127434
Список литературы
1. Фисинин В. Мировое и отечественное птицеводство: реалии и вызовы будущего. Животноводство России. 2025; (1): 8‒13. EDN GEOATN
2. Шацких Е.В., Королькова-Субботкина Д.Е. Состояние кишечника цыплятбройлеров при включении в рацион фитобиотической добавки. Аграрный вестник Урала. 2022; (S14): 81‒91. https://doi.org/10.32417/1997-4868-2022-229-14-81-91
3. Севастьянова Т.В., Уша Б.В., Носков С.Б., Альшевская А.А. Влияние функциональных таргетных пробиотиков на показатели неспецифической резистентности молодняка сельскохозяйственных животных. Аграрная наука. 2025; (11): 22‒32. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-400-11-22-32
4. Вертипрахов В.Г. Физиология кишечного пищеварения у кур (экспериментальный подход). М.: Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К.А. Тимирязева. 2022; 175. ISBN 978-5-9675-1887-4. EDN VCFFIY
5. Oni A.I., Oke O.E. Gut health modulation through phytogenics in poultry: mechanisms, benefits, and applications. Frontiers in Veterinary Science. 2025; 12: 1616734. https://doi.org/10.3389/fvets.2025.1616734
6. Oni A.I., Adeleye O.O., Adebowale T.O., Oke O.E. The role of phytogenic feed additives in stress mitigation in broiler chickens. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 2024; 108(1): 81‒98. https://doi.org/10.1111/jpn.13869
7. Obianwuna U.E. et al. Phytobiotics in poultry: revolutionizing broiler chicken nutrition with plant-derived gut health enhancers. Journal of Animal Science and Biotechnology. 2024; 15: 169. https://doi.org/10.1186/s40104-024-01101-9
8. Gou H.-Z., Zhang Y.-L., Ren L.-F., Li Z.-J., Zhang Z. How do intestinal probiotics restore the intestinal barrier?. Frontiers in Microbiology. 2022; 13: 929346. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.929346
9. Zainuddin, Darmawan A., Sumiati, Wiryawan K.G., Nahrowi. Effects of Dietary Bacillus coagulans D3372 Supplementation as Probiotics on Broiler Performance, Ileal Microflora, Meat Quality, Nutrient Retention, and Metabolizable Energy. Advances in Animal and Veterinary Sciences. 2020; 8(1): 115‒123. https://doi.org/10.17582/journal.aavs/2020/8.1.115.123
10. Лаптев Г.Ю. и др. Микробиом сельскохозяйственных животных: связь со здоровьем и продуктивностью. СПб.: Проспект науки. 2020; 334. ISBN 978-5-906109-99-6. EDN ONQNKC
11. Selionova M.I., Trukhachev V.I., Zagarin A.Y., Kulikov E.I., Belyaeva N.P. Effects of Dietary Supplementation Using Phytobiotics with Different Functional Properties on Expression of Immunity Genes, Intestinal Histology, Growth, and Meat Productivity of Broiler Chickens. Veterinary Sciences. 2025; 12(4): 302. https://doi.org/10.3390/vetsci12040302
12. Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of Relative Gene Expression Data Using Real-Time Quantitative PCR and the 2−ΔΔC T Method. Methods. 2001; 25(4): 402‒408. https://doi.org/10.1006/meth.2001.1262
13. Лаптев Г.Ю. и др. Экспрессия генов иммунитета и адаптации и состав микробиома у родительского поголовья кур и петухов (Gallus gallus L.) линий СМ5 и СМ9 кросса Смена 9. Сельскохозяйственная биология. 2023; 58(2): 313‒332. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2023.2.313rus
14. Тюрина Д.Г. и др. Продуктивность и экспрессия генов у цыплятбройлеров (Gallus gallus L.) кросса Ross 308 под влиянием антибиотиков, глифосата и штамма Bacillus sp. Сельскохозяйственная биология. 2022; 57(6): 1147‒1165. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2022.6.1147rus
15. Йылдырым Е.А. и др. Экспрессия ключевых генов в слепой кишке у кур линий СМ5 и СМ9 мясного кросса «Смена 9» на фоне замены рыбной муки. Аграрная наука. 2023; (9): 52‒58. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-374-9-52-58
16. Fancher C.A., Zhang L., Kiess A.S., Adhikari P.A., Dinh T.T.N., Sukumaran A.T. Avian Pathogenic Escherichia coli and Clostridium perfringens: Challenges in No Antibiotics Ever Broiler Production and Potential Solutions. Microorganisms. 2020; 8(10): 1533. https://doi.org/10.3390/microorganisms8101533
17. Waliaula P.K. Kiarie E.G., Diarra M.S. Predisposition factors and control strategies of avian pathogenic Escherichia coli in laying hens. Frontiers in Veterinary Science. 2024; 11: 1474549. https://doi.org/10.3389/fvets.2024.1474549
18. Панин А.Н., Моторыгин А.В., Абросимова Н.С., Межиева З.Х., Прасолова О.В., Маноян М.Г. Определение вида Escherichia сoli: проблемы таксономии и филогении. Аграрная наука. 2025; (12): 22‒27. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-401-12-22-27
19. Smati M. et al. Strain-specific impact of the high-pathogenicity island on virulence in extra-intestinal pathogenic Escherichia coli. International Journal of Medical Microbiology. 2017; 307(1): 44‒56. https://doi.org/10.1016/j.ijmm.2016.11.004
20. Johnson T.J., Wannemuehler Y., Doetkott C., Johnson S.J., Rosenberger S.C., Nolan L.K. Identification of Minimal Predictors of Avian Pathogenic Escherichia coli Virulence for Use as a Rapid Diagnostic Tool. Journal of Clinical Microbiology. 2008; 46(12): 3987‒3996. https://doi.org/10.1128/JCM.00816-08
21. Claret L., Miquel S., Vieille N., Ryjenkov D.A., Gomelsky M., DarfeuilleMichaud A. The Flagellar Sigma Factor FliA Regulates Adhesion and Invasion of Crohn Disease-associated Escherichia coli via a Cyclic Dimeric GMP-dependent Pathway. Journal of Biological Chemistry. 2007; 282(46): 33275‒33283. https://doi.org/10.1074/jbc.M702800200
22. Йылдырым Е.А. и др. Влияние различных форм лизина и метионина в рационе бройлеров на профиль транскрипции ключевых генов. Аграрная наука. 2025; (2): 87‒94. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-391-02-87-94
23. Mirakzehi M.T., Agah M.J., Baranzehi T., Saleh H. The Effects of Saccharomyces cerevisiae and Citric Acid on Productive Performance, Egg Quality Parameters, Small Intestinal Morphology, and Immune-Related Gene Expression in Laying Japanese Quails. Brazilian Journal of Poultry Science. 2022; 24(4): 1‒12. https://doi.org/10.1590/1806-9061-2022-1678
24. Shimizu M., Nii T., Isobe N., Yoshimura Y. Effects of avian infectious bronchitis with Newcastle disease and Marek’s disease vaccinations on the expression of toll-like receptors and avian β-defensins in the kidneys of broiler chicks. Poultry Science. 2020; 99(12): 7092‒7100. https://doi.org/10.1016/j.psj.2020.08.071
25. Йылдырым Е.А. и др. L-карнитин-индуцированные изменения в профиле экспрессии ключевых генов у цыплят-бройлеров кросса «Смена 9» с учетом половых различий. Аграрная наука. 2025; (10): 81‒90. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2025-399-10-81-90
26. Kim T.H. Zhou H. Overexpression of Chicken IRF7 Increased Viral Replication and Programmed Cell Death to the Avian Influenza Virus Infection Through TGFBeta/FoxO Signaling Axis in DF-1. Frontiers in Genetics. 2018; 9: 415. https://doi.org/10.3389/fgene.2018.00415
27. Sarkar D. The anti-inflammatory activity of plant derived ingredients: an analytical review. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 2020; 11(2): 496‒506. https://doi.org/10.13040/IJPSR.0975-8232.11(2).496-06
28. Saleh H.A. Yousef M.H., Abdelnaser A. The Anti-Inflammatory Properties of Phytochemicals and Their Effects on Epigenetic Mechanisms Involved in TLR4/ NF-κB-Mediated Inflammation. Frontiers in Immunology. 2021; 12: 606069. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.606069
29. Pandey S. et al. Cutting-edge knowledge on the roles of phytobiotics and their proposed modes of action in swine. Frontiers in Veterinary Science. 2023; 10: 1265689. https://doi.org/10.3389/fvets.2023.1265689
30. Belote B.L. et al. Applying different morphometric intestinal mucosa methods and the correlation with broilers performance under Eimeria challenge. Poultry Science. 2023; 102(9): 102849. https://doi.org/10.1016/j.psj.2023.102849
31. Li L., Kubasová T., Rychlik I., Hoerr F.J., Rautenschlein S. Infectious bursal disease virus infection leads to changes in the gut associated-lymphoid tissue and the microbiota composition. PLOS One. 2018; 13(2): e0192066. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0192066
32. Kitagawa H., Imagawa T., Uehara M. The apical caecal diverticulum of the chicken identified as a lymphoid organ. Journal of Anatomy. 1996; 189(3): 667‒672.
33. Selionova M., Zagarin A., Lysenko Yu. Impact of a phytogenic composition on feed conversion and certain digestive mechanisms in broiler chickens. BIO Web of Conferences. 2025; 194: 01039. https://doi.org/10.1051/bioconf/202519401039
Рецензия
Для цитирования:
Загарин А.Ю., Селионова М.И., Беляева Н.П., Лысенко Ю.А., Куликов Е.И., Жевнеров А.В. Здоровье кишечника цыплят-бройлеров при использовании в кормлении фитогенной композиции. Аграрная наука. 2026;1(8):95-104. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-409-08-95-104
For citation:
Zagarin A.Yu., Selionova M.I., Belyaeva N.P., Lysenko Yu.A., Kulikov E.I., Zhevnerov A.V. The health of broiler chickens’ intestines when using a phytogenic composition in their diet. Agrarian science. 2026;1(8):95-104. (In Russ.) https://doi.org/10.32634/0869-8155-2026-409-08-95-104
JATS XML

































